Méthode d’essai biologique : essai sur la fécondation chez les échinides ou oursins globuleux et oursins plats, chapitre 13
Annexes
- Méthodes d’essai biologique et documents d’orientation publiés par l’Unité de l’élaboration et de l’application des méthodes d’Environnement Canada
- Membres du Groupe intergouvernemental sur les essais écotoxicologiques (en octobre 2009)
- Administration centrale et bureaux régionaux d’Environnement Canada
- Examen des différentes méthodes employées précédemment par des auteurs et organismes dans des essais sur la fécondation chez les oursins globuleux et les oursins plats
- Bibliographie - Articles et documents supplémentaires se rapportant directement à l’essai canadien sur la fécondation chez les échinides
- Séries logarithmiques de concentrations convenant aux essais toxicologiques
Annexe A : Méthodes d’essai biologique et documents d’orientation publiés par l’Unité de l’élaboration et de l’application des méthodes d’Environnement CanadaNote de bas de page 82
| Titre de la méthode d’essai ou du document d’orientation | Numéro du rapport |
Date de publication |
Modifications applicables |
| Essai de létalité aiguë sur la truite arc-en-ciel | SPE 1/RM/9 | Juillet 1990 | Mai 1996 et mai 2007 |
| Essai de létalité aiguë sur l’épinoche à trois épines (Gasterosteus aculeatus) | SPE 1/RM/10 | Juillet 1990 | Mars 2000 |
| Essai de létalité aiguë sur Daphnia spp. | SPE 1/RM/11 | Juillet 1990 | Mai 1996 |
| Essai de reproduction et de survie du cladocère Ceriodaphnia dubia | SPE 1/RM/21 2e édition |
Février 2007 | -- |
| Essai de croissance et de survie sur des larves de tête-de-boule | SPE 1/RM/22 2e édition |
Février 2011 | -- |
| Essai de toxicité sur la bactérie luminescente Photobacterium phosphoreum | SPE 1/RM/24 | Novembre 1992 | -- |
| Essai d’inhibition de la croissance d’une algue d’eau douce | SPE 1/RM/25 2e édition |
Mars 2007 | -- |
| Essai de toxicité aiguë de sédiments chez des amphipodes marins ou estuariens | SPE 1/RM/26 | Décembre 1992 | Octobre 1998 |
| Essai sur la fécondation chez les échinides (oursins globuleux et oursins plats) | SPE 1/RM/27 2e édition |
Février 2011 | -- |
| Essai de toxicité sur des salmonidés (truite arc- en-ciel) aux premiers stades de leur cycle biologique | SPE 1/RM/28 2e édition |
Juillet 1998 | -- |
| Essai de survie et de croissance des larves dulcicoles de chironomes (Chironomus tentans ou Chironomus riparius) dans les sédiments | SPE 1/RM/32 | Décembre 1997 | -- |
| Essai de survie et de croissance de l’amphipode dulcicole Hyalella azteca dans les sédiments | SPE 1/RM/33 | Décembre 1997 | -- |
| Essai de mesure de l’inhibition de la croissance de la plante macroscopique dulcicole Lemna minor | SPE 1/RM/37 2e édition |
Janvier 2007 | -- |
| Essai de survie et de croissance des vers polychètes spionides (Polydora cornuta) dans les sédiments | SPE 1/RM/41 | Décembre 2001 | -- |
| Essais pour déterminer la toxicité de sols contaminés pour les vers de terre Eisenia andrei, Eisenia fetidaou Lumbricus terrestris | SPE 1/RM/43 | Juin 2004 | Juin 2007 |
| Essai de mesure de la levée et de la croissance de plantes terrestres exposées à des contaminants dans le sol | SPE 1/RM/45 | Février 2005 | Juin 2007 |
| Essai de mesure de la survie et de la reproduction de collemboles exposés à des contaminants dans le sol | SPE 1/RM/47 | Septembre 2007 | -- |
| Titre de la méthode d’essai ou du document d’orientation | Numéro du rapport |
Date de publication |
Modifications applicables |
| Méthode de référence pour la détermination de la létalité aiguë d’effluents chez la truite arc-en-ciel | SPE 1/RM/13 2e édition |
Décembre 2000 | Mai 2007 |
| Méthode de référence pour la détermination de la létalité aiguë d’effluents chez Daphnia magna | SPE 1/RM/14 2e édition |
Décembre 2000 | -- |
| Méthode de référence pour la détermination de la létalité aiguë d’un sédiment pour des amphipodes marins ou estuariens | SPE 1/RM/35 | Décembre 1998 | -- |
| Méthode de référence servant à déterminer la toxicité des sédiments à l’aide d’une bactérie luminescente dans un essai en phase solide | SPE 1/RM/42 | Avril 2002 | -- |
| Titre de la méthode d’essai ou du document d’orientation | Numéro du rapport |
Date de publication |
Modifications applicables |
| Document d’orientation sur le contrôle de la précision des essais de toxicité au moyen de produits toxiques de référence | SPE 1/RM/12 | Août 1990 | -- |
| Document d’orientation sur le prélèvement et la préparation de sédiments en vue de leur caractérisation physicochimique et d’essais biologiques | SPE 1/RM/29 | Décembre 1994 | -- |
| Document d’orientation sur la mesure de la précision des essais de toxicité sur sédiment de contrôle dopé avec un produit toxique de référence | SPE 1/RM/30 | Septembre 1995 | -- |
| Guide des essais écotoxicologiques employant une seule espèce et de l’interprétation de leurs résultats | SPE 1/RM/34 | Décembre 1999 | -- |
| Guide des essais de pathogénicité et de toxicité de nouvelles substances microbiennes pour les organismes aquatiques et terrestres | SPE 1/RM/44 | Mars 2004 | -- |
| Document d’orientation sur les méthodes statistiques applicables aux essais d’écotoxicité | SPE 1/RM/46 | Mars 2005 | Juin 2007 |
| Procédure de stabilisation du pH pendant un essai de létalité aiguë d’un effluent d’eau usée chez la truite arc-en-ciel | SPE 1/RM/50 | Mars 2008 | -- |
| Renseignements de base et conseils supplémentaires pour l’étude de la létalité aiguë d’un effluent d’eau usée pour la truite arc-en-ciel | -- | Mars 2008 | -- |
Annexe B : Membres du Groupe intergouvernemental sur les essais écotoxicologiques (en octobre 2009)
Gouvernement fédéral, Environnement Canada
Suzanne Agius
Section des programmes de protection marine
Gatineau (Qué.)
Adrienne Bartlett
Institut national de recherche sur les eaux
Burlington (Ont.)
Christian Blaise
Centre Saint-Laurent
Montréal (Qué.)
Joy Bruno
Laboratoire des essais environnementaux du Pacifique et du Yukon
North Vancouver (C.-B.)
Craig Buday
Laboratoire des essais environnementaux du Pacifique et du Yukon
North Vancouver (C.-B.)
Ken Doe
Laboratoire des essais environnementaux de l’Atlantique
Moncton (N.-B.)
Garth Elliott
Laboratoire des essais environnementaux des Prairies et du Nord
Edmonton (Alb.)
François Gagné
Recherche sur les écosystèmes fluviaux
Montréal (Qué.)
Patricia Gillis
Direction de la recherche sur l’étude des impacts sur les écosystèmes aquatiques
Burlington (Ont.)
Manon Harwood
Laboratoire des essais environnementaux du Québec
Montréal (Qué.)
Dale Hughes
Laboratoire des essais environnementaux de l’Atlantique
Moncton (N.-B.)
Paula Jackman
Laboratoire des essais environnementaux de l’Atlantique
Moncton (N.-B.)
Nancy Kruper
Laboratoire des essais environnementaux des Prairies et du Nord
Edmonton (Alb.)
Michelle Linssen-Sauvé
Laboratoire des essais environnementaux du Pacifique et du Yukon
North Vancouver (C.-B.)
Danielle Milani
Direction de la recherche sur l’étude des impacts sur les écosystèmes aquatiques
Burlington (Ont.)
Warren Norwood
Direction de la recherche sur la protection des écosystèmes aquatiques
Burlington (Ont.)
Heather Osachoff
Laboratoire des essais environnementaux du Pacifique et du Yukon
North Vancouver (C.-B.)
Joanne Parrott
Direction de la recherche sur la protection des écosystèmes aquatiques
Burlington (Ont.)
Linda Porebski
Section des programmes de protection marine
Gatineau (Qué.)
Juliska Princz
Laboratoires Sciences et technologie
Ottawa (Ont.)
Jessica Rahn
Laboratoires Sciences et technologie
Ottawa (Ont.)
Grant Schroeder
Laboratoires des essais environnementaux du Pacifique et du Yukon
North Vancouver (C.-B.)
Richard P. Scroggins
Laboratoires Sciences et technologie
Ottawa (Ont.)
Rachel Skirrow
Laboratoire des essais environnementaux du Pacifique et du Yukon
North Vancouver (C.-B.)
Troy Steeves
Laboratoire des essais environnementaux de l’Atlantique
Moncton (N.-B.)
David Taillefer
Section des programmes de protection marine
Gatineau (Qué.)
Lisa Taylor (présidente)
Laboratoires Sciences et technologie
Ottawa (Ont.)
Sylvain Trottier
Laboratoire des essais environnementaux du Québec
Montréal (Qué.)
Graham van Aggelen
Laboratoire des essais environnementaux du Pacifique et du Yukon
North Vancouver (C.-B.)
Leana Van der Vliet
Laboratoires Sciences et technologie
Ottawa (Ont.)
Brian Walker
Laboratoire des essais environnementaux du Québec
Montréal (Qué.)
Peter Wells (chercheur émérite)
Service de la conservation de l’environnement
Dartmouth (N.-É.)
Gouvernement fédéral, Pêches et Océans Canada
Robert Roy
Institut Maurice-Lamontagne
Mont-Joli (Qué.)
Gouvernement fédéral, Ressources naturelles Canada
Melissa Desforges
Programme Gestion du risque lié aux écosystèmes Laboratoire des mines et des sciences minérales,
CANMET
Ottawa (Ont.)
Philippa Huntsman-Mapila
Programme Gestion du risque lié aux écosystèmes Laboratoire des mines et des sciences minérales,
CANMET
Ottawa (Ont.)
Morgan King
Programme Gestion du risque lié aux écosystèmes Laboratoire des mines et des sciences minérales,
CANMET
Ottawa (Ont.)
Carrie Rickwood
Programme Gestion du risque lié aux écosystèmes Laboratoire des mines et des sciences minérales,
CANMET
Ottawa (Ont.)
Bernard Vigneault
Programme Gestion du risque lié aux écosystèmes Laboratoire des mines et des sciences minérales,
CANMET
Ottawa (Ont.)
Gouvernement provincial
Richard Chong-Kit
Ministère de l’Environnement de l’Ontario
Etobicoke (Ont.)
Kim Hunter
Ministère de l’Environnement de l’Ontario
Etobicoke (Ont.)
David Poirier
Ministère de l’Environnement de l’Ontario
Etobicoke (Ont.)
Julie Schroeder
Ministère de l’Environnement de l’Ontario
Toronto (Ont.)
Trudy Watson-Leung
Ministère de l’Environnement de l’Ontario
Etobicoke (Ont.)
Établissements privés de recherche/autres
Christian Bastien
Centre d’expertise en analyse environnementale du Québec
Ste-Foy (Qué.)
Barbara Bayer
Manitoba Technology Centre, ALS Laboratory
Winnipeg (Man.)
Mary Moody
Saskatchewan Research Council
Saskatoon (Sask.)
Jim Somers
Conseil canadien des normes
Ottawa (Ont.)
Annexe C : Administration centrale et bureaux régionaux d’Environnement Canada
Administration centrale
351, boulevard Saint-Joseph
Place Vincent-Massey
Gatineau (Qué.)
K1A 0H3
Région de l’Atlantique
Queen Square, 15e étage
45, chemin Alderney
Dartmouth (N.-É.)
B2Y 2N6
Région du Québec
105, rue McGill, 8e étage
Montréal (Qué.)
H2Y 2E7
Région de l’Ontario
4905, rue Dufferin, 2e étage
Downsview (Ont.) M3H 5T4
Région des Prairies et du Nord
Twin Atria no2, Bureau 210,
4999, 98e Avenue
Edmonton (Alb.)
T6B 2X3
Région du Pacifique et du Yukon
401, rue Burrard
Vancouver (C.-B.)
V6C 3S5
Annexe D : Examen des différentes méthodes employées précédemment par des auteurs et organismes dans des essais sur la fécondation chez les oursins globuleux et les oursins plats
L’examen se fonde sur les documents dont disposaient les auteurs en mars 1992. On a omis les éléments suivants des méthodes parce qu’ils sont communs à tous les essais ou parce qu’ils pourraient facilement être adaptés à toutes les méthodes examinées ci-après.
- Essais sans renouvellement - Tout le processus d’exposition et de fécondation a été réalisé dans de petits récipients, sans renouvellement des solutions.
- Substance d’essai - Toutes les méthodes conviendraient à l’essai de substances chimiques à l’état pur, de préparations, d’eaux usées ou d’échantillons d’eau de mer, en ajustant la salinité comme il est de pratique courante dans les méthodes examinées.
- Paramètres - Le paramètre habituel est l’inhibition de la fécondation par rapport au témoin. Toutes les méthodes semblent convenir à l’estimation de la CIpet de la CSEO/CMEO au moyen des techniques statistiques courantes.
Détails au sujet des auteurs, des organismes ou des méthodes.
Beak, 1988. Société canadienne d’experts-conseils (v. Références).
EVS, 1989. Société canadienne d’experts-conseils (v. Références).
MECB, 1990. Ministère de l’Environnement de la Colombie-Britannique, qui comprend van Aggelen, 1988.
GITA, 1991. Comprend cette source et Jonczyk et coll., 1991.
Dinnel et coll., 1987. Avec ses collaborateurs, Dinnel constitue une école ou propose une approche importante pour les essais avec des échinides.
USEPA, 1988. Fait partie des méthodes publiées par le bureau de Cincinnati de l’USEPA.
ASTM, 1990. Sous-comité chargé d’élaborer une méthode normalisée. Président : G.A. Chapman.
NCASI, 1991, 1992. Groupe de chercheurs parrainé par l’industrie des pâtes et papiers (v. Références).
USEPA (Pac. 91). Figure dans les Références, sous Chapman (1991). Méthode élaborée sur la côte du Pacifique aux fins des comparaisons interlaboratoire, qui a inspiré les documents des consultants des États-Unis (v. ci-après).
USEPA (Pac. 92). Figure dans les Références, sous Chapman (1992a). Méthode provisoire de l’USEPA élaborée sur la côte du Pacifique.
Kobayashi, 1971. Présente les premières méthodes employées par ce chercheur prolifique.
Kobayashi, 1984. Présente un synopsis des méthodes ultérieures employées par ce chercheur.
S. Calif. Project. Organisme régional de recherches sur la pollution. Figure dans les références sous Oshida et coll. (1981).
Nacci et coll., 1986. Publication citée par d’autres auteurs comme source de méthodes.
Cherr et coll., 1987. Auteurs du Bodega Marine Laboratory.
BML, 1991. Bodega Marine Laboratory de l’Université de Californie (v. Références).
ERCEES, 1990. Société d’experts-conseils de Californie (v. Références).
MECAS, 1990. Société d’experts-conseils de Californie (v. Références).
NWAS, 1990. Société d’experts-conseils de la côte Ouest des États-Unis (v. Références).
L’ordre de présentation de l’information est le suivant : 1) laboratoires au Canada; 2) principaux comités, organismes gouvernementaux, laboratoires et établissements d’enseignement (tous aux États-Unis); 3) sociétés d’experts-conseils et principaux auteurs. On a négligé les méthodes détaillées de Pagano et coll. parce que leur description n’était pas conforme aux exigences.
Abréviations apparaissant dans les tableaux de la présente annexe :
eau t/d = eau témoin/de dilution
NI = non indiqué
OG = oursin globuleux
OP = oursin plat
UV = rayons ultraviolets
| Document | Espèces et information sur l’endroit, le prélèvement et la période du frai |
| Beak, 1988 | Lytechinus pictus, oursin de Californie; achat; fraie toute l’année Strongylocentrotus droebachiensis, oursin vert; côtes atlantique, pacifique et arctique du Canada; réputé frayer de mars à avril |
| EVS, 1989 | S. purpuratus, oursin violet du Pacifique; prélèvement dans des lieux non contaminés ou achat; fraie de décembre à mars S. droebachiensis, comme ci-dessus S. franciscanus, oursin rouge; océan Pacifique; fraie en avril et en mai Dendraster excentricus, clypéastre excentrique du Pacifique; réputé frayer à la fin du printemps et en été |
| MECB, 1990 | D. excentricus; comme ci-dessus, mais réputé frayer de juin à novembre |
| GITA, 1991 | S. droebachiensis, comme ci-dessus, mais fraie de février à mars ou avril L. pictus, comme ci-dessus |
| Dinnel et coll., 1987 | S. purpuratus, mâles laités et femelles œuvées de décembre à mars, mais plus longtemps en laboratoire S. droebachiensis, comme ci-dessus, mâles laités et femelles œuvées de janvier à avril, mais plus longtemps en laboratoire S. franciscanus, comme ci-dessus D. excentricus, comme ci-dessus; mâles laités et femelles œuvées de mai à octobre |
| USEPA, 1988 | Arbacia punctulata, oursin violet de l’Atlantique; peut être acheté |
| ASTM, 1990 | A. punctulata, comme ci-dessus D. excentricus, comme ci-dessus S. purpuratus, comme ci-dessus S. droebachiensis, comme ci-dessus; d’autres espèces peuvent être utilisées, au besoin |
| NCASI, 1991, 1992 | D. excentricus, comme ci-dessus; fraie toute l’année, sauf de la fin décembre à la fin janvier, en modifiant les conditions de maintien en laboratoire S. purpuratus, fraie de janvier à juin en laboratoire S. droebachiensis, comme ci-dessus; aussi, de janvier à juin en laboratoire |
| USEPA (Pac. 91) | S. droebachiensis, comme ci-dessus |
| USEPA (Pac. 92) | S. purpuratus, comme ci-dessus |
| Kobayashi, 1971 | Hemicentrotus pulcherrimus, un oursin du Japon; fraie de janvier à mars Anthocidaris crassispina, un oursin du Japon; fraie de mai à août Temnopleurus toreumaticus, un oursin du Japon; fraie de juillet à octobre Pseudocentrotus depressus, un oursin du Japon; fraie d’octobre à novembre |
| Kobayashi, 1984 | Identique à Kobayashi, 1971, sauf pour l’espèce non mentionnée T. toreumaticus |
| S. Calif. Project | S. purpuratus, comme ci-dessus; prélèvement à la main |
| Nacci et coll., 1986 | A. punctulata, comme ci-dessus |
| Cherr et coll., 1987 | S. purpuratus, comme ci-dessus |
| BML, 1991 | S. purpuratus, comme ci-dessus |
| ERCEES, 1990 | S. purpuratus, comme ci-dessus; prélèvement ou achat A. punctulata, comme ci-dessus; prélèvement ou achat Lytechinus sp., comme ci-dessus; prélèvement ou achat D. excentricus, comme ci-dessus; prélèvement ou achat |
| MECAS, 1990 | NI |
| NWAS, 1990 | S. purpuratus, comme ci-dessus D. excentricus, comme ci-dessus; achat au besoin |
| Document | Durée | Eau | Alimentation |
| Beak, 1988 | 5 jours | eau de mer reconstituée | laitue romaine? OG : macroalgues |
| EVS, 1989 | ≤9 semaines | eau de mer courante à raison de 0,1 L/min par plateau peu profond ou en conditions statiques avec remplacement mensuel | OG : macroalgues brunes OP : zostère |
| MECB, 1990 | NI | eau de mer courante non filtrée | OP : non alimentés |
| GITA, 1991 | ≥7 jours | Oursin vert : eau de mer courante Oursin blanc : eau de mer reconstituée |
Oursin vert : macroalgues brunes Oursin blanc : varech ou laitue romaine |
| Dinnel et coll., 1987 | NI | eau de mer courante filtrée recirculation avec filtre | OG : macroalgues OP : plancton et détritus |
| USEPA, 1988 | NI | eau de mer filtrée, 5 L/min, pour un réservoir de 20 L contenant 20 adultes ou eau de mer reconstituée et recirculée | OG : varech ou laitue romaine |
| ASTM, 1990 | NI | eau de mer reconstituée ou eau de mer non filtrée | OG : macroalgues et laitue romaine OP : microalgues |
| NCASI, 1991, 1992 | NI | eau de mer non filtrée, 1-2 L/min pour un réservoir de 160 L | OP : algues cultivées et nourriture en flocons OG : macroalgues, laitue romaine |
| USEPA (Pac. 91) | NI | NI | NI |
| USEPA (Pac. 92) | NI | eau de mer filtrée, 5 L/min, ou eau de mer reconstituée et recirculée | varech ou laitue romaine |
| Kobayashi, 1971 | ≤2 jours | NI | NI |
| Kobayashi, 1984 | ≤2 jours | NI | NI |
| S. Calif. Project | NI | eau de mer recirculée | algues brunes |
| Nacci et coll., 1986 | NI | NI | NI |
| Cherr et coll., 1987 | NI | eau de mer courante | macroalgues |
| BML, 1991 | NI | NI | NI |
| ERCEES, 1990 | NI | eau de mer remplacée chaque semaine | algue géante |
| MECAS, 1990 | 0-2 jours | eau de mer courante | NI |
| NWAS, 1990 | jours/mois | eau de mer courante ou partiellement recirculée | OG : varech ou laitue OP : plancton et détritus |
| Document | Espèces | Température (°C) |
Salinité (g/kg) |
Oxygène (% sat.) |
Éclairage |
| Beak, 1988 | Lytechinus anamesus | 15 | 30 | NI | NI |
| EVS, 1989 | différentes espèces d’OG | ~10 | 28 | pierres de barbotage | obscurité constante |
| EVS, 1989 | D. excentricus | 15 | 28 | pierres de barbotage | photopériode |
| MECB, 1990 | NI | 27-30 | NI | NI | |
| GITA, 1991 | S. droebachiensis | 9 | 30 | NI | NI |
| GITA, 1991 | L. pictus | 15 | 30 | NI | NI |
| Dinnel et coll., 1987 | Strongylocentrotus | naturelle | |||
| Dinnel et coll., 1987 | D. excentricus | de saison | ≥27 | NI | NI |
| USEPA, 1988 | A. punctulata | 15 ± 3 | 30 | NI | NI |
| ASTM, 1990 | Strongylocentrotus | 8-10 | 25-35 | 50-100 % | NI |
| ASTM, 1990 | D. Excentricus | 12-14 | 25-35 | 50-100 % | NI |
| ASTM, 1990 | A. punctulata | 15 | 25-35 | 50-100 % | intense |
| NCASI, 1991, 1992 | Strongylocentrotus, D. excentricus |
7-14 | NI | NI | ambiant |
| USEPA (Pac. 91) | S. purpuratus | NI | NI | NI | NI |
| USEPA (Pac. 92) | S. purpuratus | 12 (10-14) | >30 (idéal. 32) | NI | NI |
| Kobayashi, 1971 | NI | NI | NI | NI | |
| Kobayashi, 1984 | NI | NI | NI | NI | |
| S. Calif. Project | S. purpuratus | 12 | NI | NI | NI |
| Nacci et coll., 1986 | NI | NI | NI | NI | |
| Cherr et coll., 1987 | NI | NI | NI | NI | |
| BML, 1991 | NI | NI | NI | NI | |
| ERCEES, 1990 | NI | NI | NI | NI | |
| MECAS, 1990 | 12 | NI | NI | NI | |
| NWAS, 1990 | S. purpuratus, D. excentricus |
10 ± 2 | ≥25 | NI | 12 h de clarté 12 h d'obscurité |
| Document | Eau et traitement recommandés |
| Beak, 1988 | eau désionisée et sels de mer |
| EVS, 1989 | eau de mer non contaminée, filtrée (pores de 1 µm); stérilisation aux UV facultative |
| MECB, 1990 | eau de mer |
| GITA, 1991 | eau désionisée et sels de mer ou eau de mer filtrée (pores de 0,45 µm) |
| Dinnel et coll., 1987 | eau de mer filtrée (pores de 5 µm) (charbon activé facultatif) ou recirculation avec filtre |
| USEPA, 1988 | eau désionisée et sels de mer ou saumure; eau de mer comme témoin supplémentaire possible |
| ASTM, 1990 | eau reconstituée avec des sels de mer ou une préparation, filtrée (pores de 0,45 µm), matières organiques totales et total des solides en suspension : ≤5 mg/L; stérilisation aux UV lorsque des pathogènes sont probables; taux de fécondation requis de 70 % lorsque les spermatozoïdes sont maintenus dans l’eau pendant 1 h |
| NCASI 1991, 1992 | eau de mer filtrée (pores de 1 µm), stérilisée aux UV, aérée et conservée 0 h |
| USEPA (Pac. 91) | eau de mer filtrée (pores de 1 µm) |
| USEPA (Pac. 92) | eau de mer naturelle ou reconstituée, de préférence avec de la saumure |
| Kobayashi, 1971 | NI; probablement de l’eau de mer |
| Kobayashi, 1984 | NI; probablement de l’eau de mer |
| S. Calif. Project | NI |
| Nacci et coll., 1986 | saumure préparée avec de l’eau de mer et diluée avec de l’eau distillée pour obtenir une salinité de 30 g/kg |
| Cherr et coll., 1987 | eau de mer filtrée (pores de 0,45 µm) |
| BML, 1991 | eau de mer filtrée et stérilisée aux UV |
| ERCEES, 1990 | eau de mer renouvelée chaque semaine et filtrée (pores de 20 µm et 5 µm) |
| MECAS, 1990 | eau de mer filtrée (pores de 0,45 µm) |
| NWAS, 1990 | eau de mer non filtrée, ajustée avec de l’eau désionisée pour obtenir une salinité de 32 g/kg |
| Document | Température (°C) | Salinité (g/kg) et méthode d’ajustement |
| Beak, 1988 | 20 ± 1 | 30 ± 2 |
| EVS, 1989 | 15 | ajustée avec des sels jusqu’à une salinité non précisée, lorsque l’essai porte sur des échantillons d’eau de mer; non ajustée lorsque l’essai porte sur des échantillons d’eau douce |
| MECB, 1990 | 10 | NI |
| GITA, 1991 | 20 ± 1 | 30 ± 2 |
| Dinnel et coll., 1987 | OG : 8-10 OP : 12-16 |
30 ± 3, ajustée avec des sels de mer ou de l’eau désionisée |
| USEPA, 1988 | 20 ± 1 | 30 ± 2, salinité de l’effluent ajustée au besoin |
| ASTM, 1990 | 12, mais 20 pour A. punctulata, et ≤2 °C d’écart entre les récipients | >25 et <32, à 1 g/kg près du témoin; salinité recommandée de 30; ajustée avec de la saumure ou des sels |
| NCASI 1991, 1992 | 12 | 30; salinité des solutions d’essai ajustée avec de la saumure ou des sels |
| USEPA (Pac. 91) | 12 | 32 ± 1 |
| USEPA (Pac. 92) | 12 ± 1 | 32 ± 2, salinité des échantillons ajustée à 32 |
| Kobayashi, 1971 | NI | NI; salinité des échantillons de faible salinité ajustée avec de la saumure ou par ébullition |
| Kobayashi, 1984 | NI | NI |
| S. Calif. Project | NI | NI; apparemment non ajustée; salinité de 31-32,6 pour certains essais |
| Nacci et coll., 1986 | NI | NI |
| Cherr et coll., 1987 | NI | NI |
| BML, 1991 | 15 | 32; salinité des échantillons et de l’eau ajustée au besoin |
| ERCEES, 1990 | « appropriée » | NI; ajustée avec de la saumure ou de l’eau désionisée au besoin |
| MECAS, 1990 | 12 ± 1 | 30 ± 2; salinité des solutions d’essai ajustée avec de la saumure ou de l’eau de source |
| NWAS | 12 ± 1 | 32 ± 2; salinité des échantillons ajustée avec de la saumure au besoin |
| Document | IOD au début (% de saturation) et ajustement | Éclairage |
| Beak, 1988 | NI | éclairage normal du laboratoire, flux nominal de 1 100 lux |
| EVS, 1989 | aération suffisante pour obtenir une teneur acceptable | NI |
| MECB, 1990 | NI | NI |
| GITA, 1991 | NI | éclairage normal du laboratoire, flux nominal de 1 100 lux |
| Dinnel et coll., 1987 | NI | NI |
| USEPA, 1988 | NI | éclairage normal du laboratoire, flux nominal de 540-1 080 lux |
| ASTM, 1990 | 90-100% dans l’eau t/d | NI |
| NCASI, 1991, 1992 | NI | éclairage normal du laboratoire, à fluorescence |
| USEPA (Pac. 91) | NI | NI |
| USEPA (Pac. 92) | NI | éclairage normal du laboratoire, flux nominal de 540-1100 lux |
| Kobayashi, 1971, 1984 | NI | NI |
| S. Calif. Project | non contrôlé | NI |
| Nacci et coll., 1986 | NI | NI |
| Cherr et coll., 1987 | NI | NI |
| BML, 1991 | NI | NI |
| ERCEES, 1990 | NI | NI |
| MECAS, 1990 | NI | NI |
| NWAS, 1990 | NI | éclairage normal du laboratoire; aucune photopériode requise |
| Document | pH de l’eau d’essai, à moins d’indication contraire, et ajustement |
| Beak, 1988 | NI |
| EVS, 1989 | pH de l’échantillon ajusté à 7,5 au besoin; NI pour le pH de l’eau d’essai |
| MECB, 1990 | NI |
| GITA, 1991 | NI |
| Dinnel et coll., 1987 | pH ajusté au besoin; niveaux non mentionnés |
| USEPA, 1988 | NI |
| ASTM, 1990 | 7,8-8,1 pour l’oursin violet du Pacifique et « analogue » pour les autres espèces; pH de l’eau t/d ajusté |
| NCASI, 1991, 1992 | NI |
| USEPA (Pac. 91) | 8,1 ± 0,1 pour l’eau t/d |
| USEPA (Pac. 92) | NI |
| Kobayashi, 1971, 1984 | NI |
| S. Calif. Project | non contrôlé; pH moyen de 7,8-7,9 dans certains essais |
| Nacci et coll., 1986 | NI |
| Cherr et coll., 1987 | NI |
| BML, 1991 | 8,0; pH de l’échantillon et de l’eau t/d ajusté au besoin; stabilisation du pH |
| ERCEES, 1990 | NI |
| MECAS, 1990 | 8,0 ± 0,2; pH des solutions d’essai ajusté au besoin |
| NWAS, 1990 | 8.0 |
| Document | Volume (mL) | Récipient | Répétitions (mL) |
| Beak, 1988 | 5 | flacons à scintillation de 20 mL, jetables | 4 |
| EVS, 1989 | 10 | tubes à essai (16 × 150 mm) avec bouchon | 3 |
| MECB, 1990 | 2 | tubes en verre borosilicaté, jetables | 3 |
| GITA, 1991 | 5 | flacons à scintillation de 20 mL, jetables | 3 |
| Dinnel et coll., 1987 | 10 | tubes à essai en verre borosilicaté (16 × 100 mm) jetables et non nettoyés | ≥3 |
| USEPA, 1988 | 5 | flacons à scintillation de 20 mL, jetables | ≥3, (habituellement 4) |
| ASTM, 1990 | NI | flacons en verre de 15-22 mL ou autre | 4 recommandées (habituellement ≥3) |
| NCASI, 1991, 1992 | 2 | tubes à culture en verre borosilicaté (13 × 100 mm), jetables | 4 |
| USEPA (Pac. 91) | 5 | tubes en verre borosilicaté (16 × 100 mm) | 3 |
| USEPA (Pac. 92) | 5 | tubes à essai en verre (16 × 100/125 mm), jetables | ≥3 |
| Kobayashi, 1971 | NI | rince-doigts en verre de 5 cm de diamètre, 3 cm de profondeur | NI |
| Kobayashi, 1984 | NI | rince-doigts en verre, rempli du milieu d’essai | NI |
| S. Calif. Project | 50 (sperme) | gobelet en polypropylène | NI |
| S. Calif. Project | 900 (œufs) | bécher de 1 L | NI |
| Nacci et coll., 1986 | 10 | flacons en verre | NI |
| Cherr et coll., 1987 | 2 | tubes à culture borosilicatés (13 × 100 mm) | NI |
| BML, 1991 | 2 | NI | 3 |
| ERCEES, 1990 | 10 | flacons à scintillation de 20 mL | 4 |
| MECAS, 1990 | 5 | flacons à scintillation de 25 mL | ≥3 |
| NWAS, 1990 | 10 | tubes à culture borosilicatés (18 × 150 mm) | 4 |
| Document | Exposition du sperme | Exposition du sperme et des œufs | Témoins |
| Beak, 1988 | 60 min | 60 min | 4, eau t/d |
| EVS, 1989 | OG : 30 min OP : 60 min |
20 min 20 min |
3, eau t/d; échantillons d’eau douce et témoins en double de la salinité préparés avec de l’eau distillée; concentrations identiques aux concentrations de l’échantillon |
| MECB, 1990 | 10 min | 10 min | 3, eau de mer |
| GITA, 1991 | 60 min | 20 min | 3, eau t/d |
| Dinnel et coll., 1987 | 60 min | 20 min | ≥3, eau t/d |
| USEPA, 1988 | 60 min | 20 min | ≥3, eau t/d (habituellement 4) |
| ASTM, 1990 | 60 min | 20 min | eau t/d; témoin du solvant, le cas échéant |
| NCASI, 1991, 1992 | 10 min | 10 min | 4, eau t/d |
| USEPA (Pac. 91) | 20, 60 min | 20, 60 min | divers témoins pour évaluer les différentes méthodes à expérimenter dans cette étude comparative |
| USEPA (Pac. 92) | 60 min | 20 min | ≥3, eau t/d; œufs non fécondés dans l’eau t/d et à concentration élevée; témoins facultatifs de l’eau de mer et de l’eau réceptrice; témoins de la salinité lorsque la salinité des échantillons est de <30 g/kg ou de >34 g/kg |
| Kobayashi, 1971 | aucune exposition; spermatozoïdes et œufs soumis ensemble à une exposition de 3 min pour mesurer le taux de fécondation | oui; on suppose qu’il s’agit d’eau t/d | |
| Kobayashi, 1984 | NI; on suppose que les spermatozoïdes et les œufs sont soumis ensemble à une exposition de 3 min pour mesurer le taux de fécondation; dans le cas de gamètes « âgés », exposition préalable des spermatozoïdes à la solution d’essai pendant 5 min et exposition préalable des œufs pendant plusieurs heures | NI | |
| S. Calif. Project | 15 min | exposition préalable des œufs pendant 30 min, puis 15 min avec les spermatozoïdes | 4, eau de mer et témoins de la salinité correspondant aux concentrations de l’effluent |
| Nacci et coll., 1986 | 60 min | 20 min | NI |
| Cherr et coll., 1987 | 10 min | 10 min | oui; détails non mentionnés |
| BML, 1991 | 10 min | 10 min | NI; on suppose qu’il s’agit d’eau t/d |
| ERCEES, 1990 | 60 min | 20 min | NI; on suppose qu’il s’agit de 4 témoins d’eau t/d |
| MECAS, 1990 | NI | NI | ≥3, eau de mer |
| NWAS, 1990 | 60 min | 20 | 4, eau t/d |
| Document | Stimulus | Collecte |
| Beak, 1988 | 0,5 mL de KCl 0,5 M | 5 mm d’eau de mer dans des boîtes de Petri |
| EVS, 1989 | 0,5 mL de KCl 0,5 M (2e injection au besoin) | eau t/d dans un bécher de 150 mL |
| MECB, 1990 | OG : 1,0 mL de KCl 0,5 M OP : 0,5 mL de KCl 0,5 M |
comme ci-dessus eau de mer à 10 °C dans un bécher de 250 mL |
| GITA, 1991 | 0,5 mL de KCl 0,5 M | 5 mm d’eau de mer dans des boîtes de Petri |
| Dinnel et coll., 1987 | OG : 1,0 mL de KCl 0,5 M OP : 0,5 mL de KCl 0,5 M |
eau de mer dans un bécher de 100 mL |
| USEPA, 1988 | 12 V c.c. pendant 30 s | bol contenant peu d’eau t/d et seringue |
| ASTM, 1990 | pour la plupart des espèces, 0,5-1,0 mL de KCl 0,5 M et 2e injection après 10 min si le frai ne se produit pas; pour A. punctulata, 12 V c.c. |
eau de mer dans un petit bécher |
| NCASI, 1991, 1992 | OG : 1,0 mL de KCl 0,5 M OP : 0,5 mL de KCl 0,5 M |
collecte avec une pipette et transfert dans des tubes à 12 °C; eau t/d dans un bécher de 50 mL (OG : bécher de 100 mL) |
| USEPA (Pac. 91) | 0,5-1,0 mL de KCl 0,5 M et 2e injection au besoin | eau t/d dans un bécher de 100-mL |
| USEPA (Pac. 92) | 0,5 mL de KCl 0,5 M et 2e injection au besoin | pour les œufs, eau t/d dans un bécher de 100 mL; sperme prélevé à sec |
| Kobayashi, 1971 | injection de KCl pour les ♀ | gonades enlevées; sperme prélevé à sec exposé à l’eau de mer |
| Kobayashi, 1984 | « méthode du KCl » | NI |
| S. Calif. Project | 0,5 mL de KCl 0,5 M | pour les œufs, eau de mer, dans un bécher de 100 mL; sperme prélevé à sec avec une pipette et transféré dans des tubes à <5 °C |
| Nacci et coll., 1986 | électricité | NI milieu humide (♂), prélèvement avec une pipette et dépôt dans des flacons sur de la glace |
| Cherr et coll., 1987 | 0,5 mL de KCl 0,5 M | eau de mer dans un bécher de 50 mL |
| BML, 1991 | 0,5-1,0 mL de KCl 0,5 M | agitation et transfert dans un rince- doigts avec de l’eau de mer (♀) |
| ERCEES, 1990 | 0,5 mL de KCl 0,5 M | dans un petit bécher, collecte à sec du sperme et dans l’eau pour les œufs |
| MECAS, 1990 | 0,5 mL de KCl 0,5 M et 2e injection après 5 min au besoin | pour les œufs, transfert dans un bécher de 100 mL contenant 20 mL d’eau; collecte à sec du sperme avec une seringue et transfert dans un flacon sur de la glace |
| NWAS, 1990 | OG : 1,0 mL de KCl 0,5 M OP : 0,5 mL de KCl 0,5 M |
dans un bécher vide de 100 mL, collecte des œufs dans l’eau t/d froide; collecte à sec du sperme avec une pipette et transfert dans un tube à essai refroidi |
| Document | Conditions et restrictions |
| Beak,1988 | sperme composite provenant de plusieurs mâles |
| EVS, 1989 | OG : conservation du sperme sur de la glace; œufs rincés 3 fois; mélange des gamètes ♂ et ♀ |
| MECB, 1990 | sperme composite de ≥2 mâles; utilisé dans ≤4 h; entreposage des œufs pendant ≤24 h |
| GITA, 1991 | sperme composite, conservé sur de la glace et utilisé dans ≤20 min; œufs provenant de 4 spécimens |
| Dinnel et coll., 1987 | l’activation de sperme pendant ≤1,5 h n’a pas eu d’effet sur l’essai; œufs rincés 3 fois; combinaison facultative |
| USEPA, 1988 | sperme utilisé dans <1 h, conservé sur de la glace; œufs conservés pendant plusieurs heures à la température ambiante |
| ASTM, 1990 | sperme conservé pendant plusieurs heures dans l’eau de mer fraîche; se conserve « au sec » et au froid de nombreuses heures; œufs rincés 2-3 fois; sperme conservé dans des récipients distincts, utiliser le test des cubes pour l’essai et la combinaison |
| NCASI, 1991, 1992 | sperme utilisé dans ≤1 h; œufs, normalement dans ≤2 h; conservation à 12 °C |
| USEPA (Pac. 91) | collecte pendant ≤30 min; œufs rincés 2 fois; combinaison du sperme |
| USEPA (Pac. 92) | collecte pendant ≤30 min; œufs rincés 2 fois; conservation dans l’eau à concentration normalisée; conservation du sperme dans des flacons distincts sur de la glace et utilisation dans ≤4 h |
| Kobayashi, 1971 | utilisation dans ≤1 h |
| Kobayashi, 1984 | utilisation des gamètes dans ≤1 h; œufs rincés plusieurs fois |
| S. Calif. Project | sperme prélevé « à sec » gardé à <5 °C; mélange des œufs de six ♀; 2 rinçages |
| Nacci et coll., 1986 | NI |
| Cherr et coll., 1987 | conservation des gamètes sur de la glace pendant ≤2 h |
| BML, 1991 | œufs et sperme (prélevé « à sec ») conservés dans des flacons sur de la glace; œufs rincés 2 fois |
| ERCEES, 1990 | combinaison du sperme et combinaison des œufs |
| MECAS, 1990 | sperme prélevé « à sec » transféré dans des flacons et conservé sur de la glace; œufs rincés 2 fois; conservation dans l’obscurité à 12 °C |
| NWAS, 1990 | conservation du sperme prélevé « à sec » dans des tubes réfrigérés; œufs rincés 2 fois et utilisation à l’état frais |
| Document | Spermatozoïdes par récipient | Œufs par récipient | Rapport spermatozoïdes:œufs |
| Beak, 1988 | 7 ou 5 millions? | 2 000 | 2 500:1 ou 3 500:1? |
| EVS, 1989 | OG : 4 millions | 2 000 | 2 000:1 |
| EVS, 1989 | OP : 2,4 millions | 2 000 | 1 200:1 |
| MECB, 1990 | NI | 500 | NI |
| GITA, 1991 | ~5 millions | 2 000 | ~2 500:1 |
| Dinnel et coll., 1987 | quantités variables | 2 000 | déterminer le rapport approprié; habituellement 200:1 pour S. purpuratus, 1 000:1 pour l’oursin rouge, 2 000:1 pour l’oursin vert, 1 200:1 pour D. excentricus |
| USEPA, 1988 | 5 millions | 2 000 | 2 500:1 |
| ASTM ,1990 | quantité empirique pour obtenir un taux de fécondation de 70-90 % | 200/mL de solution d’essai | habituellement 200:1 pour S. purpuratus, 1 200:1 pour D. excentricus et 2 000-2 500:1 pour les autres espèces |
| NCASI, 1991, 1992 | OP : 20 000-60 000 OG : quantité empirique |
500 400 |
40:1-120:1 déterminer le rapport approprié |
| USEPA (Pac. 91) | quantités variables | 1 120? | différents rapports pour comparer différentes méthodes |
| USEPA (Pac. 92) | 560 000 | 1 120 | 500:1 (rapport fixe) |
| Kobayashi, 1971 | NI | NI | NI |
| Kobayashi, 1984 | NI | NI | NI |
| S. Calif. Project | NI (1,2 mL de préparation étalon) | 31 500 | NI |
| Nacci et coll., 1986 | 0,1 million | 1 000 | 100:1 (1 000:1, selon les auteurs) |
| Cherr et coll., 1987 | 0,5 million | 500 | 1 000:1 |
| BML, 1991 | NI (0,1 mL de sperme « sec ») | NI (0,1 mL) | 1 000:1 |
| ERCEES, 1990 | quantité empirique | 2 000 | déterminer le rapport approprié |
| MECAS, 1990 | 1 million? | quantité empirique | déterminer le rapport approprié pour obtenir un taux de fécondation de 70-90 % |
| NWAS, 1990 | quantité empirique | 2000 | déterminer le rapport approprié pour obtenir un taux de fécondation de 70-90 %; habituellement, rapports de 200-2 000:1 |
| Document | Méthode d’ajustement |
| Beak, 1988 | formule d’Abbott |
| EVS, 1989 | formule d’Abbott |
| MECB, 1990 | formule d’Abbott |
| GITA, 1991 | formule d’Abbott:Note de table b A = (O - T) × (100) / (100 - T) |
| Dinnel et coll., 1987 | formule d’Abbott |
| USEPA, 1988 | formule d’Abbott |
| ASTM, 1990 | « taux de fécondation ajusté » : AF = 100 × OF/TFNote de table b [les symboles ont changé, mais cette formule donne le même résultat que la formule d’Abbott, calculée cette fois pour la fécondation] |
| NCASI, 1991, 1992 | NI |
| USEPA (Pac. 91) | NI |
| USEPA (Pac. 92) | comme dans USEPA (1988) |
| Kobayashi, 1971 | NI |
| Kobayashi, 1984 | NI |
| S. Calif. Project | la CI50 n’est pas mentionnée comme étant une statistique à évaluer |
| Nacci et coll., 1986 | NI |
| Cherr et coll., 1987 | « normalisée » pour les taux de fécondation chez les témoins; méthode non indiquée |
| BML, 1991 | NI |
| ERCEES, 1990 | NI |
| MECAS, 1990 | NI |
| NWAS, 1990 | formule d’Abbott |
| Document | Taux de fécondation chez les témoins (%) | Autres exigences |
| Beak, 1988 | NI | |
| EVS, 1989 | NI | |
| MECB, 1990 | NI | |
| GITA, 1991 | NI | |
| Dinnel et coll., 1987 | ≥50 | |
| USEPA, 1988 | ≥70 (un taux de >90 pourrait masquer la toxicité) | |
| ASTM, 1990 | ≥50; taux souhaitable : 70-90; taux idéal 80-95 | |
| NCASI, 1991, 1992 | taux acceptable : 50-100; taux préférable : 50-90 | |
| USEPA (Pac. 91) | taux souhaitable : 80-95 | |
| USEPA (Pac. 92) | taux de fécondation ≥50 chez les témoins; la concentration des spermatozoïdes ne devrait pas être de >2 fois supérieure ou inférieure à celle de la concentration d’essai; essentiellement, fécondation nulle dans les témoins contenant uniquement des œufs (eau t/d et effluent) | |
| Kobayashi, 1971 | NI | |
| Kobayashi, 1984 | prétest : ≥85 (« gamètes âgés » :≥91) | la membrane doit se soulever dans les 3 min qui suivent la fécondation |
| S. Calif. Project | NI | |
| Nacci et coll., 1986 | ≥60m, ≤90 | |
| Cherr et coll., 1987 | NI | |
| BML, 1991 | NI | |
| ERCEES, 1990 | ≥70, ≤90 | courbe dose-effet positive et logique; l’essai a satisfait aux exigences physicochimiques |
| MECAS, 1990 | NI | |
| NWAS, 1990 | ≥70, ≤90 |
| Document | Substance chimique | Exigé? | Type d’essai ou paramètreNote de table a.2 |
| Beak ,1988 | NI | ||
| EVS, 1989 | dodécyl sulfate de sodium | oui | dans les essais de répétition, 5 concentrations de 1,0-10 mg/L |
| MECB, 1990 | NI | ||
| GITA, 1991 | chlorure de cadmium | non | |
| Dinnel et coll., 1987 | argent | non | |
| USEPA, 1988 | sulfate de cuivre | oui | pour chaque lot de gamètes |
| ASTM, 1990 | NI | non | « pourrait mesurer la sensibilité d’un frai » |
| NCASI, 1991, 1992 | NI | ||
| USEPA (Pac. 91) | cuivre | non? | |
| USEPA (Pac. 92) | cuivre, dodécyl sulfate de sodium ou autre toxique | oui | dans chaque série d’essais |
| Kobayashi, 1971 | NI | ||
| Kobayashi, 1984 | NI | ||
| S. Calif. Project | NI | ||
| Nacci et coll., 1986 | NI | ||
| Cherr et coll., 1987 | azoture de sodium | non | |
| BML, 1991 | NI | ||
| ERCEES, 1990 | NI | ||
| MECAS, 1990 | NI | ||
| NWAS, 1990 | azoture de sodium | oui | en parallèle avec l’essai principal |
Annexe E : Bibliographie - Articles et documents supplémentaires se rapportant directement à l’essai canadien sur la fécondation chez les échinides
La présente liste pourrait être utile aux laboratoires qui désirent consulter une plus vaste gamme d’ouvrages relatifs aux essais avec des échinides. Beaucoup de ces documents contiennent des données sur les concentrations de divers polluants qui sont toxiques pour les gamètes d’échinides, ou comparent les résultats sur d’autres stades de développement ou d’autres organismes. Certaines notes ont été ajoutées entre crochets.
Adams, J.A., « Effect of PCB (Aroclor 1254) on Early Development and Mortality in Arbacia Eggs », Water Air Soil Pollut., 20(1):1-6 (1983).
Allen, H., « Effects of Petroleum Fractions on the Early Development of a Sea Urchin », Mar. Pollut. Bull., 2:138-140 [développement embryonnaire plus sensible que la fécondation] (1971).
ASTM (American Society for Testing and Materials), Proposed Standard EXXX for Conducting Static Acute Toxicity Tests with Echinoid Embryos, version provisoire no 1, ASTM Subcommittee of E-47.01 on Aquatic Toxicology, Philadelphie (PA) [prés. : P.A. Dinnel, Ph. D., Fisheries Res. Inst., Univ. Washington, Seattle (WA)] [l’essai de 48-96 h porte sur le développement embryonnaire] (1991).
ASZ (American Society of Zoologists), « Developmental Biology of the Echinoderms. A Symposium », Amer. Zool., 15 (3):485-775 (1975).
Bay, S.M., P.S. Oshida et K.D. Jenkins, « A Simple New Bioassay Based on Echinochrome Synthesis by Larval Sea Urchins », Mar. Environ. Res., 8:29-39 (1982).
Bougis, P., « Effet du cuivre sur la croissance du plutéus d’Oursin (Paracentrotus lividus) », C.R. Acad. Sci. Paris, 260:2929-2931 [croissance des embryons] (1965).
Bougis, P., M.C. Corre et M. Étienne, « Sea Urchin Larvae as a Tool for Assessment of the Quality of Sea-water », Ann. Inst. Oceanogr. (Paris), 55:21-26 (1979).
Bresch, H., R. Speilhoff, V. Mohr et H. Barkemeyer, « Use of Sea Urchin Egg for Quick Screen Testing of the Biological Activity of Substances. I. Influence of Fractions of a Tobacco Smoke Condensate on Early Development », Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 141:747-752 (1972).
Canevari, G.P., et G.P. Lindblom, « Some Dissenting Remarks on Deleterious Effects of Corexit 9527 on Fertilization and Development », Mar.Pollut. Bull., 7 (7):127-128 [fait suite à un article de Lönning et Hagström, 1976, et offre une critique] (1976).
Carr, R.S., et M. Nipper (réd.), Porewater Toxicity Testing: Biological, Chemical and Ecological Considerations, Proceedings from the Workshop on Sediment Porewater Toxicity Testing: Biological, Chemical, and Ecological Considerations, Society of Environmental Toxicology and Chemistry Press, Pensacola (FL) (2003).
Castagna, A., F. Sinatra, M. Scalia et V. Capodicasa, « Observations of the Effect of Zinc on the Gametes and Various Development Phases of Arbacia lixula », Mar. Biol., 64:285-289 [motilité des spermatozoïdes réduite en 96 h] (1981).
Ceas, M.P., « Effects of 3,4-Benzopyrene on Sea Urchin Egg Development », Acta Embryol Exp., 3:267-272 (1974).
de Angelis, E., et G.G. Giordano, « Sea Urchin Egg Development Under the Action of Benzo-a-pyrene and 7-12-Dimethylbenz-a-anthracene », Cancer Res., 34:1275-1280 (1974).
den Besten, P.J., H.J. Herwig, D.I. Zandee et P.A. Voogt, « Effects of Cadmium and PCBs on Reproduction of the Sea Star Asterias rubens: Aberrations in the Early Development », Ecotoxicol. Environ. Safety, 18:173-180 (1989).
Dinnel, P.A., Adaption of the Sperm/Fertilization Bioassay Protocol to Hawaiian Sea Urchin Species, rapport définitif préparé pour le State of Hawaii Dept. of Health, Marine Biological Consultants of Washington, rapport MBCW-8801 (1988).
------, Annotated Bibliography of Bioassays Releated to Sediment Toxicity Testing in Washington State, rapport définitif préparé pour l’U.S. Army Corps of Engineers, Seattle (WA), School of Fisheries, Univ. Washington, rapport FRI-UW-9017 (1990).
Dinnel, P.A., et R.M. Kocan, Puget Sound Estuary Program Sediment Bioassay Comparison Test: Results of the Sand Dollar (Dendraster excentricus) Embryo Bioassays, rapport définitif préparé pour le Battelle Laboratories et l’Environmental Protection Agency, Seattle (WA), Marine Biological Consultants of Washington, rapport MBCW-8802 (1988).
Dinnel, P.A., S.C. Crumley et Q.J. Stober, Sand dollar (Dendraster excentricus) Sperm and Embryo Bioassay of Puget Sound Receiving Water Samples, rapport définitif préparé pour le Washington State Shellfish Lab., Brinnon (WA), School of Fisheries, Univ. Washington, rapport FRI-UW-7912 [essais parallèles menés dans deux laboratoires avec du sperme et des embryons d’oursins plats et des larves d’huîtres] (1979).
Dinnel, P.A., Q.J. Stober et D.H. DiJulio, « Sea Urchin Sperm Bioassay for Sewage and Chlorinated Seawater and its Relation to Fish Bioassays », Mar. Environ. Res., 5:29-39 (1981).
Dinnel, P.A., Q.J. Stober, J.M. Link, M.W. Letourneau, W.E. Roberts, S.P. Felton et R.E. Nakatani, Methodology and Validation of a Sperm Cell Toxicity Test for Testing Toxic Substances in Marine Waters, School of Fisheries, Univ. Washington, rapport FRI-UW-8306 (1983).
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Annexe F : Séries logarithmiques de concentrations convenant aux essais toxicologiquesNote de bas de page 83
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
|---|---|---|---|---|---|---|
| 100 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 |
| 32 | 46 | 56 | 63 | 68 | 72 | 75 |
| 10 | 22 | 32 | 40 | 46 | 52 | 56 |
| 3.2 | 10 | 18 | 25 | 32 | 37 | 42 |
| 1.0 | 4.6 | 10 | 16 | 22 | 27 | 32 |
| 2.2 | 5.6 | 10 | 15 | 19 | 24 | |
| 1.0 | 3.2 | 6.3 | 10 | 14 | 18 | |
| 1.8 | 4.0 | 6.8 | 10 | 13 | ||
| 1.0 | 2.5 | 4.6 | 7.2 | 10 | ||
| 1.6 | 3.2 | 5.2 | 7.5 | |||
| 1.0 | 2.2 | 3.7 | 5.6 | |||
| 1.5 | 2.7 | 4.2 | ||||
| 1.0 | 1.9 | 3.2 | ||||
| 1.4 | 2.4 | |||||
| 1.0 | 1.8 | |||||
| 1.3 | ||||||
| 1.0 |
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