Méthode d’essai biologique servant à déterminer la toxicité des sédiments à l’aide d’une bactérie luminescente : chapitre 11

Annexes

Méthodes d’essai biologique et guides à l’appui publiés par la Section de l’élaboration et de l’application des méthodes d’Environnement Canada
Composition du Groupe intergouvernemental de la toxicité aquatique (avril 2002)
Adresses de l’administration centrale et des bureaux régionaux d’Environnement Canada
Membres du Groupe consultatif scientifique
Variantes du mode opératoire des essais de toxicité de sédiments en phase solide employant des bactéries luminescentes et décrites dans les méthodes canadiennes, états-uniennes et néerlandaises
Fiche de laboratoire employée pour les essais de toxicité des sédiments employant V. fischeri

Annexe A : Méthodes d’essai biologique et guides à l’appui publiés par la Section de l’élaboration et de l’application des méthodes d’Environnement Canada^{Note de bas de page 18}

A. Méthodes génériques (universelles)
Titre de la méthode ou du guide	N^o de publication	Date de publication	Modifications ultérieures
Essai de létalité aiguë sur la truite arc-en-ciel	SPE 1/RM/9	Juillet 1990	Mai 1996
Essai de létalité aiguë sur l’épinoche à trois épines (Gasterosteus aculeatus)	SPE 1/RM/10	Juillet 1990	Mars 2000
Essai de létalité aiguë sur Daphnia spp.	SPE 1/RM/11	Juillet 1990	Mai 1996
Essai de reproduction et de survie sur le cladocère Ceriodaphnia dubia	SPE 1/RM/21	Février 1992	Novembre 1997
Essai de croissance et de survie sur des larves de tête-de-boule	SPE 1/RM/22	Février 1992	Novembre 1997
Essai de toxicité sur la bactérie luminescente Photobacterium phosphoreum	SPE 1/RM/24	Novembre 1992	--
Essai d’inhibition de la croissance de l’algue d’eau douce Selenastrum capricornutum	SPE 1/RM/25	Novembre 1992	Novembre 1997
Essai de toxicité aiguë de sédiments chez les amphipodes marins ou estuariens	SPE 1/RM/26	Décembre 1992	Octobre 1998
Méthode d’essai biologique : essai sur la fécondation chez les échinides (oursins verts et oursins plats)	SPE 1/RM/27	Décembre 1992	Novembre 1997
Essai de toxicité sur des salmonidés aux premiers stades de leur cycle biologique	SPE 1/RM/28 1^re édition	Décembre 1992	Janvier 1995
Méthode d’essai biologique : essais toxicologiques sur des salmonidés (truite arc-en-ciel) aux premiers stades de leur cycle biologique	SPE 1/RM/28 2^e édition	Juillet 1998	--
Méthode d’essai biologique : essai de survie et de croissance des larves dulcicoles de chironomes (Chironomus tentans ou Chironomus riparius) dans les sédiments	SPE 1/RM/32	Décembre 1997	--
Méthode d’essai biologique : essai de survie et de croissance de l’amphipode dulcicole Hyalella azteca dans les sédiments	SPE 1/RM/33	Décembre 1997	--
Méthode d’essai biologique : essai de mesure de l’inhibition de la croissance de la plante macroscopique dulcicole Lemna minor	SPE 1/RM/37	Mars 1999	--

B. Méthodes de référence ^{Note de la table a}
Titre de la méthode du guide	N^o de publication	Date de publication	Modifications ultérieures
Méthode de référence pour la détermination de la létalité aiguë d’effluents chez la truite arc-en-ciel	SPE 1/RM/13 1^re édition	Juillet 1990	Mai 1996, décembre 2000
Méthode de référence pour la détermination de la létalité aiguë d’effluents chez la truite arc-en-ciel	SPE 1/RM/13 2^e édition	Décembre 2000	--
Méthode de référence pour la détermination de la létalité aiguë d’effluents chez Daphnia magna	SPE 1/RM/14 1^re édition	Juillet 1990	Mai 1996, décembre 2000
Méthode de référence pour la détermination de la létalité aiguë d’effluents chez Daphnia magna	SPE 1/RM/14 2^e édition	Décembre 2000	--
Méthode d’essai biologique : méthode de référence pour la détermination de la létalité aiguë d’un sédiment pour des amphipodes marins ou estuariens	SPE 1/RM/35	Décembre 1998	--

C. Guides
Titre de la méthode du guide	N^o de publication	Date de publication	Modifications ultérieures
Document d’orientation sur le contrôle de la précision des essais de toxicité au moyen de produits toxiques de référence	SPE 1/RM/12	Août 1990	--
Document d’orientation sur le prélèvement et la préparation de sédiments en vue de leur caractérisation physico-chimique et d’essais biologiques	SPE 1/RM/29	Décembre 1994	--
Document d’orientation sur la mesure de la précision des essais de toxicité sur sédiment de contrôle dopé avec un produit toxique de référence	SPE 1/RM/30	Septembre 1995	--
Guide des essais écotoxicologiques employant une seule espèce et de l’interprétation de leurs résultats	SPE 1/RM/34	Décembre 1999	--

Annexe B : Composition du Groupe intergouvernemental de la toxicité aquatique (avril 2002)

Administration fédérale (Environnement Canada)

C. Blaise
Centre Saint-Laurent
Montréal (Québec)

M. Bombardier
Centre de technologie environnementale
Ottawa (Ontario)

U. Borgmann
Institut national de recherche sur les eaux
Burlington (Ontario)

J. Bruno
Centre des sciences de l’environnement du Pacifique
North Vancouver (Colombie-Britannique)

C. Buday
Centre des sciences de l’environnement du Pacifique
North Vancouver (Colombie-Britannique)

K. Doe
Centre des sciences de l’environnement de l’Atlantique
Moncton (Nouveau-Brunswick)

G. Elliott
Service de la protection de l’environnement
Edmonton (Alberta)

F. Gagné
Centre Saint-Laurent
Montréal (Québec)

M. Harwood
Service de la protection de l’environnement
Montréal (Québec)

D. Hughes
Centre des sciences de l’environnement de l’Atlantique
Moncton (Nouveau-Brunswick)

P. Jackman
Centre des sciences de l’environnement de l’Atlantique
Moncton (Nouveau-Brunswick)

N. Kruper
Service de la protection de l’environnement
Edmonton (Alberta)

M. Linssen
Centre des sciences de l’environnement du Pacifique
North Vancouver (Colombie-Britannique)

D. MacGregor
Centre de technologie environnementale
Ottawa (Ontario)

D. Moul
Centre des sciences de l’environnement du Pacifique
North Vancouver (Colombie-Britannique)

W.R. Parker
Service de la protection de l’environnement
Fredericton (Nouveau-Brunswick)

L. Porebski
Direction du milieu marin
Hull (Québec)

D. Rodrigue
Direction générale pour l’avancement des technologies environnementales
Hull (Québec)

R. Scroggins
Centre de technologie environnementale
Ottawa (Ontario)

A. Steenkamer
Centre de technologie environnementale
Ottawa (Ontario)

T. Steeves
Centre des sciences de l’environnement de l’Atlantique
Moncton (Nouveau-Brunswick)

G. van Aggelen (président)
Centre des sciences de l’environnement du Pacifique
North Vancouver (Colombie-Britannique)

R. Watts
Centre des sciences de l’environnement du Pacifique
North Vancouver (Colombie-Britannique)

P. Wells
Service de la conservation de l’environnement
Dartmouth (Nouvelle-Écosse)

Administration fédérale (Pêches et Océans Canada)

R. Roy
Institut Maurice-Lamontagne
Mont-Joli (Québec)

Provinces

C. Bastien
Ministère de l’Environnement du Québec
Sainte-Foy (Québec)

B. Bayer
Environnement Manitoba
Winnipeg (Manitoba)

D. Bedard
Ministère de l’Environnement de l’Ontario
Rexdale (Ontario)

M. Mueller
Ministère de l’Environnement de l’Ontario
Rexdale (Ontario)

D. Poirier
Ministère de l’Environnement de l’Ontario
Rexdale (Ontario)

J. Schroeder
Ministère de l’Environnement de l’Ontario
Rexdale (Ontario)

Annexe C : Adresses de l’administration centrale et des bureaux régionaux d’Environnement Canada

Administration centrale
351, boul. Saint-Joseph
Place Vincent-Massey Hull (Québec)
K1A 0H3

Région de l’Atlantique
15^e étage, Queen Square
45 Alderney Drive
Dartmouth (Nouvelle-Écosse)
B2Y 2N6

Région du Québec
105, rue McGill
8^e étage
Montréal (Québec)
H2Y 2E7

Région de l’Ontario
4905, rue Dufferin, 2^e étage
Downsview (Ontario)
M3H 5T4

Région de l’Ouest et du Nord
Pièce 210, Twin Atria n^o 2
4999 - 98^e Avenue
Edmonton (Alberta)
T6B 2X3

Région du Pacifique et du Yukon
224, rue Esplanade Ouest
North Vancouver (Colombie-Britannique)
V7M 3H7

Annexe D : Membres du Groupe consultatif scientifique

Membres du Groupe

M. Craig Buday
Environnement Canada
Centre des sciences de l’environnement du Pacifique
2645, route Dollarton
North Vancouver (C.-B.) V7H 1B1
Tél. : (604) 924-2514
Téléc. : (604) 924-2554
Courriel : craig.buday@ec.gc.ca

Dr Allen Burton, Jr.
Institute for Environmental Quality
Wright State University Dayton, OH 45435, USA
Tél. : (937) 775-4995
Téléc. : (937) 775-4997
Courriel : aburton@wright.edu

M. Ken Doe
Environnement Canada
Laboratoire de toxicologie
Section de la qualité de l’environnement,
Direction des contaminants de l’environnement
Centre des sciences de l’environnement de l’Atlantique
C.P. 23 005
Moncton (N.-B.) E1A 6S8
Tél. : (506) 851-3486
Téléc. : (506) 851-6608
Courriel : Ken.Doe@ec.gc.ca

Dr Kay Ho
Atlantic Ecology Division
U.S. Environmental Protection Agency
27 Tarzwell Drive
Narragansett, RI 02882, USA
Tél. : (401) 782-3196
Téléc. : (401) 782-3030
Courriel : ho.kay@epamail.epa.gov

Mme Paula Jackman
Environnement Canada
Laboratoire de toxicologie
Section de la qualité de l’environnement,
Direction des contaminants de l’environnement
Centre des sciences de l’environnement de l’Atlantique
C.P. 23005
Moncton (N.-B.) E1A 6S8
Tél. : (506) 851-2886
Téléc. : (506) 851-2907
Courriel : Paula.Jackman@ec.gc.ca

M. Jim Osborne
Environnement Canada Direction du milieu marin
Place Vincent-Massey, 12^e étage
351, boul. Saint-Joseph
Hull (Qc) K1A 0H3
Tél. : (819) 953-2265
Téléc. : (819) 953-0913
Courriel : Jim.Osborne@ec.gc.ca

Mme Linda Porebski
Environnement Canada
Direction du milieu marin
Place Vincent-Massey, 12^e étage
351, boul. Saint-Joseph
Hull (Qc) K1A 0H3
Tél. : (819) 953-4341
Téléc. : (819) 953-0913
Courriel : Linda.Porebski@ec.gc.ca

Dr Philippe Ross
Environmental Science and Engineering Division
Colorado School of Mines Golden, CO 80401-1887, USA
Tél. : (303) 273-3473
Téléc. : (303) 273-3413
Courriel : pross@mines.edu

M. Paul Topping
Environnement Canada
Direction du milieu marin
Place Vincent-Massey, 12^e étage
351, boul. Saint-Joseph
Hull (Qc) K1A 0H3
Tél. : (819) 953-0663
Téléc. : (819) 953-0913
Courriel : Paul.Topping@ec.gc.ca

M. Sylvain Trottier
Environnement Canada
Centre Saint-Laurent
105, rue McGill
Montréal (Qc) H2Y 2E7
Tél. : (514) 496-7104
Téléc. : (514) 496-7143
Courriel : sylvain.trottier@ec.gc.ca

Autorité scientifique

M. Rick Scroggins
Environnement Canada
Section de l’élaboration et de l’application des méthodes
Centre de technologie environnementale
3439, River Road South
Ottawa (Ont.) K1A 0H3
Tél. : (613) 990-8569
Téléc. : (613) 990-0173
Courriel : scroggins.richard@etc.ec.gc.ca

Consultants

Dr Don McLeay
McLeay Environmental Ltd.
2999, route Spring Bay
Victoria (C.-B.) V8N 5S4
Tél. : (250) 472-2608
Téléc. : (250) 472-2609
Courriel : mcleayenvir@islandnet.com

M. Gary Wohlgeschaffen
Sciences de l’environnement marin
Institut Bedford d’océanographie
C.P. 1006
Dartmouth (N.-É.) B2Y 4A2
Tél. : (902) 426-2479
Téléc. : (902) 426-6695
Courriel : WohlgeschaffenG@mar.dfo-mpo.gc.ca

Annexe E : Variantes du mode opératoire des essais de toxicité de sédiments en phase solide employant des bactéries luminescentes et décrites dans les méthodes canadiennes, états-uniennes et néerlandaises

(Énumération chronologique, mettant en vedette l’organisation plutôt que l’auteur ou les auteurs)

EC 1992 : Environnement Canada, Méthode d’essai biologique : essai de toxicité sur la bactérie luminescente Photobacterium phosphoreum, Conservation et protection, Ottawa, rapport SPE 1/RM/24, 67 p. (1992).

MICROBICS 1992 : Microbics, Detailed Solid-Phase Test Protocol, p. 153-178, dans : Microtox Manual--A Toxicity Testing Handbook, société Microbics, Carlsbad, CA (1992).

MICROBICS 1995a : Microbics, Microtox Acute Toxicity Solid-Phase Test, société Microbics, Carlsbad, CA, 18 p. (1995a).

ASTM 1995 : ASTM (American Society for Testing and Materials), Standard Guide for Conducting Sediment Toxicity Tests with Luminescent Bacteria, ébauche 8, ASTM, Philadelphie, PA (1995).

EC 1996a : Environnement Canada, Procedure for Conducting a Microtox Solid-Phase Test, Section de toxicologie, Laboratoire de la qualité de l’environnement, Direction de la conservation de l’environnement, Moncton, mode opératoire normalisé 43, 10 p., janvier 1996, G. Wohlgeschaffen. Centre des sciences de l’environnement de l’Atlantique, Moncton (1996a).

AZUR 1997 : AZUR, Basic Solid-Phase Test, AZUR Environmental, Carlsbad, CA, ébauche du 1997/11/6, 4 p. (1997).

AZUR 1998a : AZUR, Basic Solid-Phase Test (Basic SPT), AZUR Environmental, Carlsbad, CA, 16 p. (1998).

AZUR 1998b : AZUR, Solid-Phase Test (SPT), AZUR Environmental, Carlsbad, CA, 19 p. (1998).

EC 1999a : Environnement Canada, Standard Operating Procedure for the Solid-Phase Toxicity Test Using Luminescent Bacteria (Vibrio fischeri), mode opératoire normalisé IC50MS10.SOP, première ébauche, 18 p., octobre 1999, C. Buday. Centre des sciences de l’environnement du Pacifique, North Vancouver (1999a).

NICMM 1999 : NICMM (National Institute for Coastal and Marine Management/RIKZ), Standard Operating Procedures, Marine: Microtox Solid-Phase (Vibrio fisheri) Sediment Toxicity Test, C.A. Schipper, R.M. Burgess, M.E. Schot, B.J. Kater et J. Stronkhorst, projet SPECIE*BIO, RIKZ/AB-99.107x, version 1.1, juin 1999, 23 p, NICMM, Middelburg, Pays-Bas (1999).

1. Type d’échantillon, prélèvement et transport
Document source	Type d’échant.	Méthode de prélèvement	Temp. de transport (°C)	Récipient	Prélèvements réitérés ?
EC 1992	sol, sédiment, boue	suivre les orientations données dans ASTM (1991) et EC (1994)	1-7	On préfère les récipients de verre ou à revêtement de Téflon^MD ; sont acceptables le polyéthylène et le polypropylène ; 500 mL à 1 L	n. p.
MICROBICS 1992	sol, sédiment	n. p.^{Note de la table a.1}	n. p.	capsules neuves en verre borosilicaté doublé de TFE	n. p.
MICROBICS 1995a sol, sédiment	n. p.	n. p.	capsules neuves en verre borosilicaté doublé de Téflon	n. p.
ASTM 1995	sédiment	suivre les guides sur les normes ASTM E 1367, E 1383, et E 1391	4 ± 2	capsules neuves^{Note de la table b} borosilicaté doublé de TFE	oui^{Note de la table c}
EC 1996a	sol, sédiment	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
AZUR 1997	sol, sédiment	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
AZUR 1998a	sol, sédiment	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
AZUR 1998b	sol, sédiment	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
EC 1999a	sol, sédiment	n. p.	n. p.	tube à centrifuger de 50 mL	n. p.
NICMM 1999	sédiment	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.

Notes de la table

Notes de bas de page a.1

n. p. = non précisé.

Retour à la référence de la note de bas de pagea.1

Notes de bas de page b

Si on les réutilise, les nettoyer comme suit : savon non toxique, lavage à l’acide, double rinçage à l’eau distillée.

Retour à la référence de la note de bas de pageb

Notes de bas de page c

On devrait prélever des échantillons réitérés à chaque emplacement pour déterminer la variabilité des caractéristiques du sédiment.

Retour à la référence de la note de bas de pagec

2. Entreposage des échantillons
Document source	Espace libre ?	Température (°C)	Lumière ou obscurité	Durée maximale
EC 1992	non	4 ± 2	obscurité	6 semaines
MICROBICS 1992	non	2-8	n. p.	48 h, si possible
MICROBICS 1995a	non	réfrigérateur	n. p.	48 h, si possible
ASTM 1995	non	4 ± 2	obscurité	2-8 semaines
EC 1996a	n. p.^{Note de la table a.2}	n. p.	n. p.	n. p.
AZUR 1997	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
AZUR 1998a	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
AZUR 1998b	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
EC 1999a	non	4 ± 2	obscurité	6 semaines
NICMM 1999	n. p.	4	obscurité	< 4 semaines

3. Traitement préalable et caractérisation des échantillons
Document source	Tamisage ?	Suppression des gros organismes ?	Suppression des grosses particules ?	Homogé- néisation de l’éch. ?	Caractérisation du sédiment
EC 1992	n. p.^{Note de la table a.3}	n. p.	n. p.	mélanger à fond	couleur
MICROBICS 1992	n. p.	n. p.	oui (≥ 1 mm)	oui	pH
MICROBICS 1995a	n. p.	n. p.	n. p.	oui (1-3 min)	pH
ASTM 1995	non	oui	oui (> 5 mm)	oui	carbone organique ou matières volatiles totales, granulométrie, ammoniaque, pourcentage d’eau, pH
EC 1996a	n. p.	n. p.	n. p.	oui	n. p.
AZUR 1997	n. p.	n. p.	n. p.	oui (1-3 min)	n. p.
AZUR 1998a	n. p.	n. p.	n. p.	mélanger à fond	n. p.
AZUR 1998b	n. p.	n. p.	n. p.	mélanger à fond	n. p.
EC 1999a	non	oui	oui	mélanger à fond	n. p.
NICMM 1999	n. p.	n. p.	n. p.	oui	dans le cas de l’eau de porosité^{Note de la table b.1} : pH, salinité, sulfures, ammoniaque

4. Dessiccation d'un sous-échantillon pour déterminer la teneur en eau
Document source	Quantité (g)	Nombre de répétitions	Précision de la pesée (g)	Température (°C)	Durée
EC 1992	n. p.^{Note de la table a.4}	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
MICROBICS 1992	5	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
MICROBICS 1995a	5 ± 0,2	3	± 0,01	100 ± 5	24 h
ASTM 1995	quelques grammes	n. p.	n. p.	~ 100	pendant la nuit
EC 1996a	3-5	3	± 0,01	60-100	48 h
AZUR 1997	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
AZUR 1998a	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
AZUR 1998b	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.	n. p.
EC 1999a	5 ± 0,2	3	± 0,01	100 ± 5	24 h
NICMM 1999	~ 5	3	n. p.	100	24 h

5. Sous-échantillon de sédiment, diluant, récipients de la solution mère et des solutions filles
Document source	Masse du sous-éch. (g)	Séparation de l’eau de porosité ?	Type de diluant	Volume de diluant (mL)	Récipient de la solution mère	Récipient des solutions filles
EC 1992	0,4	oui (centrifug.)	« diluant en phase solide »	4,0	s. o.^{Note de la table a.5}	tube d’EPS^{Note de la table b.2}
MICROBICS 1992	0,3	oui (centrifug.)	« diluant en phase solide »	3,0	s. o.^{Note de la table a.5}	tube d’EPS^{Note de la table b.2}^,^{Note de la table c.1}
MICROBICS 1995a	7,00	facultatif	solution de NaCl ou de NaNO₃	35	récipient neuf de verre ou de plastique de 50 mL	tube d’EPS^{Note de la table b.2}^,^{Note de la table c.1}
ASTM 1995	7 ± 0,35^{Note de la table d}	non	NaCl à 3,5 % ou NaNO₃ à 3,02 %^{Note de la table e}	35	récipient neuf de verre borosilicaté propre^{Note de la table f}	tube de verre borosilicaté neuf, propre^{Note de la table f}
EC 1996a	7 ± 0,05	n. p.^{Note de la table g}	« diluant en phase solide »	35	récipient de polypropylène neuf, jetable, de 50 mL	tube d’EPS^{Note de la table b.2}^,^{Note de la table c.1}
AZUR 1997	7,00	n. p.	diluant ou eau de mer de référence	35	becher d’env. 50 mL	cuvette^{Note de la table h}
AZUR 1998a	7,00	n. p.	« diluant en phase solide »	35	becher d’env. 50 mL	cuvette^{Note de la table h}
AZUR 1998b	7,00	n. p.	« diluant en phase solide »	35	becher d’env. 50 mL	tube d’EPS^{Note de la table b.2}^,^{Note de la table c.1}
EC 1999a	0,3	oui (centrifug.)	NaCl à 3,5 %	3,0	s. o.^{Note de la table a.5}	tube d’EPS^{Note de la table b.2}^,^{Note de la table i}
NICMM 1999	7,0	n. p.	« diluant en phase solide »	35	tube à sérum	tube d’EPS^{Note de la table b.2}^,^{Note de la table c.1}

Notes de la table

Notes de bas de page a.5

s. o. = sans objet. La première dilution (solution fille à la concentration maximale) se fait dans le tube de styrène pour essai en phase solide (tube d’EPS).

Retour à la référence de la note de bas de pagea.5

Notes de bas de page b.2

EPS = essai en phase solide. Chaque tube, de polystyrène, mesure 15,5 mm sur 56 (capacité de 7,5 mL), possède un fond hémisphérique, adapté à la colonne de filtration (tableau 12, présente annexe). Fournisseur : Evergreen Scientific, pièce n^o 208-3193-020, Los Angeles, Californie, tél. : (323) 583-1331.

Retour à la référence de la note de bas de pageb.2

Notes de bas de page c.1

Les tubes d’EPS sont déposés dans un râtelier ou portoir (bloc d’incubateur), mis à incuber à 15 °C (bain d’eau).

Retour à la référence de la note de bas de pagec.1

Notes de bas de page d

La masse effectivement utilisée devrait être connue à ± 0,05 g et doit être connue à ± 0,35 g.

Retour à la référence de la note de bas de paged

Notes de bas de page e

Utiliser du NaCl (à 3,5 %) pour les sédiments marins ou estuariens et NaNO₃ (à 3.02 %) pour les sédiments d’eau douce.

Retour à la référence de la note de bas de pagee

Notes de bas de page f

Récipients de 16 mm de diamètre (15,6 mm, diamètre nominal), à fond hémisphérique de 15,3 mm de diamètre. On les porte à l’incubateur, à 15 °C, dans un portoir convenable.

Retour à la référence de la note de bas de pagef

Notes de bas de page g

n. p. = non précisé.

Retour à la référence de la note de bas de pageg

Notes de bas de page h

En verre borosilicaté, jetable, de 50 mm de longueur sur 12 de diamètre (11,75 mm, diamètre nominal) ; fond plat. Les cuvettes sont déposées dans les puits de l’incubateur.

Retour à la référence de la note de bas de pageh

Notes de bas de page i

Les tubes d’EPS reposent dans un portoir (bloc d’incubateur) à la température ambiante.

Retour à la référence de la note de bas de pagei

6. Mélange de la solution mère de sédiment
Document source	Ajustement du pH ?	Dispositif de mélange	Profondeur du tourbillon	Temps de mélange (min)
EC 1992	n. p.^{Note de la table a.6}	pipette (pour agitation et mesure)	s. o.^{Note de la table b.3}	n. p. (bien mélanger)
MICROBICS 1992	n. p.^{Note de la table c.2}	pipette (pour agitation et mesure)	s. o.	n. p. (complètement disperser l’échantillon et le mettre en suspension)
MICROBICS 1995a	n. p.	plaque magnétique et barreau magnétique enrobé de téflon	moitié de la hauteur du liquide	10
ASTM 1995	non^{Note de la table d.1}	plaque magnétique et barreau magnétique enrobé de téflon	moitié de la hauteur du liquide	20^{Note de la table e.1}
EC 1996a	n. p.	agitateur magnétique	tiers de la hauteur du liquide	10
AZUR 1997	n. p.	plaque magnétique et barreau magnétique enrobé de téflon	moitié de la hauteur du liquide	10
AZUR 1998a	n. p.	plaque magnétique et barreau magnétique enrobé de téflon	moitié de la hauteur du liquide	10
AZUR 1998b	n. p.	plaque magnétique et barreau magnétique enrobé de téflon	moitié de la hauteur du liquide	10
EC 1999a	non	pipette (pour agitation et mesure)	s. o.	n. p. (complètement disperser l’échantillon et le mettre en suspension)
NICMM 1999	n. p.	plaque magnétique et barreau magnétique enrobé de téflon	moitié de la hauteur du liquide	10, ou jusqu’à homogénéisation de la suspension

Notes de la table

Notes de bas de page a.6

n. p. = non précisé.

Retour à la référence de la note de bas de pagea.6

Notes de bas de page b.3

s. o. = sans objet.

Retour à la référence de la note de bas de pageb.3

Notes de bas de page c.2

De 6 à 8, le pH a effet minime sur le réactif reconstitué (c’est-à-dire les bactéries lyophilisées reconstituées).

Retour à la référence de la note de bas de pagec.2

Notes de bas de page d.1

Le pH optimal est de 7,3 ; peu d’effet si le pH va de 6,6 à 7,8.

Retour à la référence de la note de bas de paged.1

Notes de bas de page e.1

Vérifier après cinq minutes, pour voir si les grosses particules, qui se déposent rapidement après agitation, sont exemptes d’argile.

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7. Préparation des séries de dilutions (solutions filles)
Document source	Rapport de dilution	Nombre de solutions filles	Volume de solution mère transvasé dans le tube de la première solution fille (mL)	Nombre de de pipettages pour remettre les particules en suspension	Volume successivement transvasé de la première solution fille à la dernière (mL)
EC 1992	1/2	9	s. o.^{Note de la table a.7}	n. p.^{Note de la table b.4}	2,0
MICROBICS 1992	1/2	12^{Note de la table c.3}	s. o.	5 ou 6	1,5
MICROBICS 1995a	1/2	13^{Note de la table c.3}	1,5^{Note de la table d.2}	n. p.	1,5
ASTM 1995	1/2^{Note de la table c.3}	12^{Note de la table c.3}	1,5^{Note de la table e.2}	plusieurs	1,5
EC 1996a	1/2	12	1,5^{Note de la table d.2}^,^{Note de la table e.2}	3 ou 4	1,5
AZUR 1997	1/2	9	2,0^{Note de la table f.1}	à fond	1,0
AZUR 1998a	1/2	9	2,0^{Note de la table f.1}^,^{Note de la table g.1}	mélanger	1,0
AZUR 1998b	1/2	13	1,5^{Note de la table d.2}^,^{Note de la table g.1}	mélanger	1,5
EC 1999a	1/2	10	1,5^{Note de la table e.2}	5 ou 6	1,5
NICMM 1999	1/2	13	1,5	10	1,5

Notes de la table

Notes de bas de page a.7

s. o. = sans objet.

Retour à la référence de la note de bas de pagea.7

Notes de bas de page b.4

n. p. = non précisé.

Retour à la référence de la note de bas de pageb.4

Notes de bas de page c.3

Tableau des dilutions décrit, mais l’emploi d’autres combinaisons de milieux témoins, de rapports de dilution et de nombres de dilutions est également énuméré.

Retour à la référence de la note de bas de pagec.3

Notes de bas de page d.2

Le tube à la concentration maximale renferme déjà 1,5 mL de diluant.

Retour à la référence de la note de bas de paged.2

Notes de bas de page e.2

Utiliser une pipette à grande ouverture pour éviter son colmatage ; tenir à environ 5 mm de la paroi, à environ 15 mm de fond.

Retour à la référence de la note de bas de pagee.2

Notes de bas de page f.1

Transféré directement dans la cuvette du photomètre M500 Analyzer.

Retour à la référence de la note de bas de pagef.1

Notes de bas de page g.1

Utiliser une pipette à grande ouverture pour éviter son colmatage, en l’appuyant contre la paroi, à environ 2 cm de fond.

Retour à la référence de la note de bas de pageg.1

8. Concentration maximale des solutions filles, solutions témoins, échantillons pour essai en double et récipients inoculés
Document source	Concentration maximale des solutions filles^{Note de la table a.8}	Nombre de solutions témoins^{Note de la table b.5}	Dédoublement de chaque solution fille ?	Lectures de l’intensité lumineuse initiale (I₀) ?	Récipients inoculés avec le réactif^{Note de la table c.4}
EC 1992	10 %	1	facultatif	non	tubes d’EPS
MICROBICS 1992	98 684 mg/L ou 9,868 %	3	facultatif	non	tubes d’EPS
MICROBICS 1995a	19,737 %	4	oui	non	tubes d’EPS
ASTM 1995	10 %	3	non	non	tubes de verre
EC 1996a	197 368 mg/L	3	non	non	tubes d’EPS
AZUR 1997	9,9 % ou 99 000 mg/L	1	facultatif^{Note de la table d.3}	oui^{Note de la table e.3}	cuvettes^{Note de la table f.2}
AZUR 1998a	99 000 mg/L	1	facultatif^{Note de la table d.3}	oui^{Note de la table e.3}	cuvettes^{Note de la table f.2}
AZUR 1998b	9,9 % ou 99,01 mg/L^{Note de la table g.2}	2	non	non	tubes d’EPS
EC 1999a	9,868 %	3	non	non	tubes d’EPS
NICMM 1999	19,737 %	4	oui	non	tubes d’EPS

Notes de la table

Notes de bas de page a.8

Les pourcentages sont en poids par volume.

Retour à la référence de la note de bas de pagea.8

Notes de bas de page b.5

Elles sont constituées uniquement de diluant, auquel on ajoute l’inoculum bactérien.

Retour à la référence de la note de bas de pageb.5

Notes de bas de page c.4

Par « réactif », on entend la bactérie reconstituée (v. tableau 11). Voir, dans le tableau 5, la description des récipients dans la colonne « Récipient des solutions filles ».

Retour à la référence de la note de bas de pagec.4

Notes de bas de page d.3

Lorsqu’un essai en double est exigé, effectuer ce mode opératoire deux fois.

Retour à la référence de la note de bas de paged.3

Notes de bas de page e.3

L’intensité lumineuse initiale, au temps zéro (I₀) est mesurée sur des aliquotes de 500 µL de diluant plus réactif seulement, dans 10 cuvettes (répétitions).

Retour à la référence de la note de bas de pagee.3

Notes de bas de page f.2

Les solutions filles ne sont pas inoculées avec le réactif. On transvase plutôt une aliquote de 500 µL de chaque solution fille dans les cuvettes initiales après qu’on a mesuré l’intensité lumineuse initiale. Voir la description des cuvettes dans le tableau 5.

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Notes de bas de page g.2

Ce chiffre semble erroné. Plus probablement 99 000 mg/L.

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9. Équilibrage des solutions filles avant l'inoculation des bactéries
Document source	Température d’équilibrage (°C)	Délai d’équilibrage (min)
EC 1992	15 ± 0,3	n. p.
MICROBICS 1992	15	10
MICROBICS 1995a	15	10
ASTM 1995	15 ± 0,5	n. p.
EC 1996a	15	10
AZUR 1997	n. p.^{Note de la table a.9}	5
AZUR 1998a	n. p.^{Note de la table a.9}	5
AZUR 1998b	15	5
EC 1999a	température ambiante (~ 20)	5
NICMM 1999	15	10

10. Organismes d’essai, source et entreposage
Document source	Espèce	Souche	Source	Température d’entreposage (°C)^{Note de la table a.10}
EC 1992	P. phosphoreum^{Note de la table b.6}	B-11177 du NRRL^{Note de la table c.5}	Microbics	~ 20
MICROBICS 1992	P. phosphoreum^{Note de la table b.6}	n. p.	Microbics	n. p.
MICROBICS 1995a	n. p.^{Note de la table d.4}	n. p.	Microbics	n. p.
ASTM 1995	V. fischeri	B-11177 du NRRL^{Note de la table c.5}	n. p.	~ 20
EC 1996a	P. phosphoreum^{Note de la table b.6}	n. p.	n. p.	n. p.
AZUR 1997	n. p.	n. p.	AZUR^{Note de la table e.4}	n. p.
AZUR 1998a	n. p.	n. p.	AZUR	n. p.
AZUR 1998b	n. p.	n. p.	AZUR	n. p.
EC 1999a	V. fischeri	B-11177 du NRRL^{Note de la table c.5}	AZUR	~ 20
NICMM 1999	V. fischeri	n. p.	AZUR	n. p.

Notes de la table

Notes de bas de page a.10

Les organismes d’essai, achetés sous forme de bactéries lyophilisées en flacon (« réactif bactérien »), se conservent longtemps à ~20 °C.

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Notes de bas de page b.6

Par la suite identifié comme Vibrio fischeri.

Retour à la référence de la note de bas de pageb.6

Notes de bas de page c.5

Déposé au Northern Regional Research Laboratory (NRRL), à Preoria (Illinois), États-Unis.

Retour à la référence de la note de bas de pagec.5

Notes de bas de page d.4

n. p. = non précisé.

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Notes de bas de page e.4

Le 15 août 1996, la société Microbics est devenue AZUR Environmental.

Retour à la référence de la note de bas de pagee.4

11. Reconstitution des bactéries lyophilisées
Document source	Source de la solution de reconstitution^{Note de la table a.11}	Temp. (°C)	Durée de vie utile	Tournoiement du flacon	Agitation des bactéries reconstituées
EC 1992	Microbics	3 ou 5	2 h	3 ou 4 fois	20 fois avec une pipette de 0,5 mL
MICROBICS 1992	Microbics	n. p.^{Note de la table b.7}	2 h	3 ou 4 fois	20 fois avec une pipette de 0,5 mL
MICROBICS 1995a	Microbics	n. p.^{Note de la table b.7}	n. p.	n. p.	10 fois avec une pipette de 0,5 mL
ASTM 1995	eau	5,5 ± 1	n. p.	quelques fois	20 fois avec une pipette de 0,5 mL
EC 1996a	AZUR	n. p.^{Note de la table b.7}	n. p.	3 fois	10 fois avec une pipette de 0,5 mL
AZUR 1997	AZUR	n. p.^{Note de la table b.7}	3 h	n. p.	10 fois avec une pipette de 0,5 mL
AZUR 1998a	AZUR	n. p.^{Note de la table b.7}	3 h	3 ou 4 fois	≥ 10 fois avec une pipette de 0,5 mL
AZUR 1998b	AZUR	n. p.^{Note de la table b.7}	3 h	3 ou 4 fois	≥ 10 fois avec une pipette de 0,5 mL
EC 1999a	eau distillée au laboratoire	n. p.^{Note de la table b.7}	3 à 4 h	3 ou 4 fois	20 fois avec une pipette de 0,5 mL
NICMM 1999	AZUR	n. p.^{Note de la table b.7}	4 h	non^{Note de la table c.6}	20 fois avec une pipette de 1 mL

Notes de la table

Notes de bas de page a.11

Eau distillée, non toxique, vérifiée par un essai de toxicité aiguë avec les bactéries luminescentes.

Retour à la référence de la note de bas de pagea.11

Notes de bas de page b.7

n. p. = non précisé. Température posée égale à 5 °C, puisqu’on utilise le photomètre M500 Analyzer (Microbics, 1995b).

Retour à la référence de la note de bas de pageb.7

Notes de bas de page c.6

À l’aide d’une pipette, on porte, dans le flacon, de la solution de reconstitution de la cuvette se trouvant dans le puits de réactif, on mélange 20 fois, puis on la porte, après pipettage, dans la cuvette se trouvant dans le puits de réactif et on laisse équilibrer 30 min.

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12. Inoculation, incubation et filtration des solutions filles
Document source	Volume d’inoculum (µL)	Méthode de mélange	Nombre de brassages	Durée d’incubation (min)	Temp. d’incub. (°C)	Colonnes de filtration ?^{Note de la table a.12}
EC 1992	n. p.^{Note de la table b.8}	n. p.	n. p.	20	15 ± 0,3	oui
MICROBICS 1992	20	pipette de 1,5 mL	5 ou 6 fois	20	15	oui
MICROBICS 1995a	20	agitation, puis pipette de 1,5 mL	n. p.	20	15	oui
ASTM 1995	20	agitation ou tourbillon	n. p.	20	15 ± 0,5	oui
EC 1996a	20	pipette de 1,5 mL	2 fois	20	15	oui
AZUR 1997	10^{Note de la table c.7}	agitation	n. p.	30^{Note de la table c.7}	n. p.^{Note de la table d.5}	non^{Note de la table e.5}
AZUR 1998a	10^{Note de la table c.7}	agitation	n. p.	30^{Note de la table c.7}	n. p.^{Note de la table d.5}	non^{Note de la table e.5}
AZUR 1998b	20	pipette de 1,5 mL	n. p.	20	15	oui
EC 1999a	20	pipette de 1,5 mL	5 ou 6 fois	20	temp. ambiante (~ 20)	oui
NICMM 1999	20	à la main	n. p.	20	15	oui

Notes de la table

Notes de bas de page a.12

Colonnes de séparation de sérum en polyéthylène, 13 mm, diamètre extérieur ; 11 mm, diamètre intérieur ; 67 mm de hauteur, avec obturation flexible de 15 mm de diamètre à l’extrémité inférieure, où le filtre s’adapte au tube d’EPS (tableau 5). Le filtre lui-même, situé à l’extrémité inférieure, possède un diamètre de 6 mm et une épaisseur de 4 mm. La taille des pores est de 15 à 45 µm, selon le fournisseur, Evergreen Scientific, Los Angeles, CA, tél. : (323) 583-1331, n^o de la pièce : 208-3193-020.

Retour à la référence de la note de bas de pagea.12

Notes de bas de page b.8

n. p. = non précisé.

Retour à la référence de la note de bas de pageb.8

Notes de bas de page c.7

On inocule les cuvettes initiales renfermant 0,5 mL de diluant, mais non les solutions filles, et on les laisse se stabiliser 15 min après mélange. On prend ensuite les lectures initiales. Commence une période d’incubation de 30 min, après transvasement de 500 µL de chaque solution fille dans les cuvettes initiales et mélange à la pipette.

Retour à la référence de la note de bas de pagec.7

Notes de bas de page d.5

Posée égale à 15 °C, puisque les cuvettes sont dans le photomètre M500 Analyzer (Microbics, 1995b).

Retour à la référence de la note de bas de paged.5

Notes de bas de page e.5

Cette méthode d’essai n’emploie pas de filtration.

Retour à la référence de la note de bas de pagee.5

13. Mesure de la luminescence bactérienne
Document source	Analyseur (photomètre)	Volume transvasé (µL)	Type de cuvette	Conditions de stabilisation^{Note de la table a.13}	Cuvette de lecture
EC 1992	Modèles 2055 et 500 de Microtox	500	en verre^{Note de la table b.9}	5 min, 15 ± 0,3 °C	insertion manuelle
MICROBICS 1992	Modèle 500 de Microtox	500	en verre^{Note de la table b.9}	5 min^{Note de la table c.8}	insertion manuelle
MICROBICS 1995a	Modèle 500	500	en verre^{Note de la table b.9}	10 min^{Note de la table c.8}	insertion manuelle
ASTM 1995	photomètre	500	en verre^{Note de la table b.9}	10 min, 15 ± 0,5°C	notice d’emploi du photomètre
EC 1996a	Modèle 500	500	en verre^{Note de la table b.9}	n. p.^{Note de la table c.8}^,^{Note de la table d.6}^,^{Note de la table e.6}	insertion manuelle
AZUR 1997	n. p.^{Note de la table d.6}^,^{Note de la table f.3}	500^{Note de la table g.3}	n. p.^{Note de la table d.6}^,^{Note de la table h.1}	n. p.^{Note de la table c.8}^,^{Note de la table d.6}^,^{Note de la table i.1}	insertion manuelle
AZUR 1998a	Modèle 500	500^{Note de la table g.3}^,^{Note de la table j}	n. p.^{Note de la table d.6}^,^{Note de la table h.1}	n. p.^{Note de la table c.8}^,^{Note de la table d.6}^,^{Note de la table i.1}	insertion manuelle
AZUR 1998b	Modèle 500	500	n. p.^{Note de la table d.6}^,^{Note de la table h.1}	10 min^{Note de la table c.8}	insertion manuelle
EC 1999a	Modèle 500 de Microtox	500	en verre^{Note de la table b.9}	5 min^{Note de la table c.8}	insertion manuelle
NICMM 1999	Modèle 500 de Microtox	500	en verre^{Note de la table b.9}	n. p.^{Note de la table c.8}	insertion manuelle

Notes de la table

Notes de bas de page a.13

Après que la solution bactérienne filtrée a été transvasée, du tube mis à incuber vers la cuvette du photomètre, on la laisse s’équilibrer à la température précisée pendant la période précisée.

Retour à la référence de la note de bas de pagea.13

Notes de bas de page b.9

Verre borosilicaté jetable, 50 mm de longueur sur 12 mm de diamètre (11,75 mm nominaux) ; fond plat.

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Notes de bas de page c.8

On pose la température égale à 15 ± 0,5 °C, si on utilise le photomètre Model M500 Analyzer (Microbics, 1995b).

Retour à la référence de la note de bas de pagec.8

Notes de bas de page d.6

n. p. = non précisé.

Retour à la référence de la note de bas de paged.6

Notes de bas de page e.6

Posés égales à 10 min (le programme de saisie des données du logiciel attend 10 min avant de demander une lecture).

Retour à la référence de la note de bas de pagee.6

Notes de bas de page f.3

Par hypothèse, le photomètre Model M500 Analyzer.

Retour à la référence de la note de bas de pagef.3

Notes de bas de page g.3

Transvasement dans les cuvettes initiales, à partir de quoi commence la période d’incubation de 30 min. On agite les cuvettes après 15 min. Inutile de secouer les cuvettes avant la lecture de la luminescence, parce que, secouement ou non, la CE50 tend à être semblable.

Retour à la référence de la note de bas de pageg.3

Notes de bas de page h.1

Posé être le type habituel de verrerie, comme dans toutes les autres méthodes connexes.

Retour à la référence de la note de bas de pageh.1

Notes de bas de page i.1

La durée de stabilisation fait partie de la période d’incubation de 30 min (v. tableau 12).

Retour à la référence de la note de bas de pagei.1

Notes de bas de page j

Prendre les lectures des cuvettes, sans secouement, quand les 30 min sont écoulées, puis, de nouveau, après secouement, après 31 min écoulées, puis comparer les résultats de la CI50.

Retour à la référence de la note de bas de pagej

14. Emploi d'un sédiment de référence
Document source	Utilisation et propriétés du sédiment de référence	Emploi pour corriger les valeurs de l’échantillon ?^{Note de la table a.14}
EC 1992	utilisation obligatoire^{Note de la table b.10} ; essai parallèle ; la granulométrie ainsi que la teneur en matière organique et inorganique devraient être semblables.	n. p.^{Note de la table c.9}
MICROBICS 1992	facultatif ou souhaitable ; des échantillons « témoins » prélevés dans le même secteur sont utiles pour distinguer la toxicité.	n. p.
MICROBICS 1995a	souhaitable ; apparier avec la matière d’essai pour ce qui concerne la granulométrie, la teneur en matière organique et l’humidité.	facultatif ; données d’analyse « réduites » par rapport à la référence.
ASTM 1995	recommandé ; important d’apparier la granulométrie avec celle de la matière d’essai.	facultatif^{Note de la table d.7} ; données d’analyse « réduites » par rapport à la référence.
EC 1996a	facultatif	n. p.
AZUR 1997	recommandé ; apparier la granulométrie, la teneur en matière organique et l’humidité avec celles de la matière d’essai.	non^{Note de la table e.7}
AZUR 1998a	recommandé ; apparier la granulométrie, la teneur en matière organique et l’humidité avec celles de la matière d’essai.	non^{Note de la table e.7}
AZUR 1998b	recommandé ; apparier la granulométrie, la teneur en matière organique et l’humidité avec celles de la matière d’essai.	n. p.
EC 1999a	recommandé ; des échantillons « témoins » prélevés dans le même secteur et possédant une granulométrie semblable sont utiles pour distinguer la toxicité.	non
NICMM 1999	correction effectuée pour tenir compte de la fraction mesurée de limons et d’argiles dans l’échantillon à l’aide d’une équation obtenue à partir de ses propres données et de celles de Ringwood et al. (1997).	employer l’équation pour corriger la CE 50.

Notes de la table

Notes de bas de page a.14

Les valeurs corrigées de l’extinction lumineuse (gammas ; Γ_T) dans chaque solution fille sont calculées automatiquement par le logiciel, qui applique les valeurs du sédiment de référence (Microbics, 1995) ou calculées par l’application des équations 1 à 3 du § 6.1.

Retour à la référence de la note de bas de pagea.14

Notes de bas de page b.10

L’essai exige au moins un échantillon de référence ou un sédiment témoin (« non contaminé »).

Retour à la référence de la note de bas de pageb.10

Notes de bas de page c.9

n. p. = non précisé.

Retour à la référence de la note de bas de pagec.9

Notes de bas de page d.7

La correction effectuée par rapport à un échantillon de référence peut être importante pour les échantillons dont la CI50 est supérieure à environ 0,25 % ; la correction est rarement justifiée pour les échantillons très toxiques possédant une CI50 inférieure à environ 0,1 %. La décision d’utiliser cette correction est laissée à la discrétion du chercheur.

Retour à la référence de la note de bas de paged.7

Notes de bas de page e.7

Choisir un échantillon de référence possédant des caractéristiques semblables (p. ex. granulométrie, teneur en matière organique, humidité) à celle de la matière d’essai ; comparer les résultats de chacune lorsque l’on juge de la toxicité ou non de la matière d’essai (v. tableau 15).

Retour à la référence de la note de bas de pagee.7

15. Analyse des données et lignes directrices pour juger de la toxicité de l'échantillon
Document source	Saisie des données	Méthode d’analyse	Effet ou paramètre mesuré^{Note de la table a.15} (unités)	Lignes directrices pour juger de la toxicité ?^{Note de la table b.11}
EC 1992	par le logiciel	manuelle ou par établissement d’un graphique par le logiciel^{Note de la table c.10}	CI 50 (% poids/vol.)	non
MICROBICS 1992	par le logiciel	manuelle ou par établissement d’un graphique par le logiciel	CExx (mg/L)	non
MICROBICS 1995a	par le logiciel	manuelle ou par établissement d’un graphique par le logiciel	CExx (% poids/vol.)	non
ASTM 1995	à la main	calculs et graphiques établis à la main	CIxx (% poids/vol.)	oui^{Note de la table d.8}
EC 1996a	par le logiciel	graphique établi par le logiciel	CIxx (mg/L)	non
AZUR 1997	par le logiciel	graphique établi par le logiciel	CE 50 (% poids/vol.) ou CE 50 (mg/L)	oui^{Note de la table e.8}
AZUR 1998a	n. p.^{Note de la table f.4}^,^{Note de la table g.4}	graphique établi par le logiciel	CI 50 (mg/L)	oui^{Note de la table h.2}
AZUR 1998b	n. p.^{Note de la table f.4}^,^{Note de la table g.4}	n. p.^{Note de la table c.10}^,^{Note de la table f.4}	n. p.	non
EC 1999a	par le logiciel	graphique établi par le logiciel	CI 50 (% poids/vol.)	oui^{Note de la table i.2}
NICMM 1999	par le logiciel	manuelle ou par établissement d’un graphique par le logiciel	CExx (% poids/vol.)	non

Notes de la table

Notes de bas de page a.15

CE = concentration efficace ; CI = concentration inhibitrice.

Retour à la référence de la note de bas de pagea.15

Notes de bas de page b.11

Lignes directrices particulières, pour juger, d’après l’effet mesuré, si la matière visée par l’essai est toxique ou non.

Retour à la référence de la note de bas de pageb.11

Notes de bas de page c.10

On pose que le graphique est construit par le logiciel.

Retour à la référence de la note de bas de pagec.10

Notes de bas de page d.8

Une CI50 de 0,7 % peut représenter un échantillon non toxique renfermant un fort pourcentage d’argiles. Dans ce cas, une CI50 supérieure à 0,1 % traduirait une faible toxicité de ce sédiment. Une CI 50 apparente d’au moins 10 % est fréquente dans les échantillons non toxiques renfermant moins de particules très fines, de sorte qu’une faible toxicité serait une CI supérieure à 5 %.

Retour à la référence de la note de bas de paged.8

Notes de bas de page e.8

La matière d’essai est toxique lorsque sa CE50 est inférieure à celle de l’échantillon de référence.

Retour à la référence de la note de bas de pagee.8

Notes de bas de page f.4

n. p. = non précisé.

Retour à la référence de la note de bas de pagef.4

Notes de bas de page g.4

On pose que la saisie des données est faite par le logiciel.

Retour à la référence de la note de bas de pageg.4

Notes de bas de page h.2

La matière d’essai est toxique lorsque sa CI50 est inférieure à celle de l’échantillon de référence.

Retour à la référence de la note de bas de pageh.2

Notes de bas de page i.2

La matière d’essai est pratiquement non toxique lorsque sa CI50, corrigée pour tenir compte de l’humidité, est supérieure à 0,5 %, légèrement toxique lorsque le même paramètre, également corrigé, se trouve dans l’intervalle de 0,1 à 0,5 % et toxique lorsque sa CI50, corrigée pour tenir compte de l’humidité, est inférieure à 0,1 %.

Retour à la référence de la note de bas de pagei.2

16. Normalisation et correction des données pour tenir compte de l’humidité, de la couleur et de la turbidité
Document source	Normalisation pour tenir compte de l’humidité ?	Correction pour tenir compte de la couleur ?	Correction pour tenir compte de la turbidité ?
EC 1992	n. p.^{Note de la table a.16}	n. p.	n. p.
MICROBICS 1992	non	oui^{Note de la table b.12}	oui^{Note de la table b.12}
MICROBICS 1995a	oui^{Note de la table c.11}	oui^{Note de la table d.9}	oui^{Note de la table d.9}
ASTM 1995	facultatif	facultatif^{Note de la table d.9}^,^{Note de la table e.9}	n. p.
EC 1996a	oui	oui	oui
AZUR 1997	n. p.	non^{Note de la table f.5}	non^{Note de la table g.5}
AZUR 1998a	n. p.	non^{Note de la table f.5}	non^{Note de la table g.5}
AZUR 1998b	n. p.	non^{Note de la table f.5}	non^{Note de la table g.5}
EC 1999a	oui^{Note de la table c.11}	non	non
NICMM 1999	oui^{Note de la table c.11}	n. p.	n. p.

Notes de la table

Notes de bas de page a.16

n. p. = non précisé.

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Notes de bas de page b.12

Vérifier la concentration de l’échantillon à la valeur de la CE50 correspondant à la teinte visible ou à la turbidité visible ; si elle correspond à une coloration ou à une turbidité évidente(s), effectuer le protocole de correction de l’effet de la couleur (Colour Correction Protocol).

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Notes de bas de page c.11

Utiliser le logiciel Microtox^MD pour saisir les données relatives aux sédiments humides ou secs, les corriger et créer automatiquement un nouveau fichier des données corrigées, du poids humide au poids sec.

Retour à la référence de la note de bas de pagec.11

Notes de bas de page d.9

Effectuer la correction en employant la valeur correspondante d’un échantillon de référence, conformément à la note a du tableau 14 de la présente annexe.

Retour à la référence de la note de bas de paged.9

Notes de bas de page e.9

Cette correction n’est pas recommandée lorsque l’on possède les résultats d’essais effectués sur un échantillon de référence convenable.

Retour à la référence de la note de bas de pagee.9

Notes de bas de page f.5

Comme la couleur de l’échantillon de référence et celle de l’échantillon ou des échantillons d’essai devraient être semblables, l’effet net de la couleur serait négligeable.

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Notes de bas de page g.5

Comme la turbidité de l’échantillon de référence et celle de l’échantillon ou des échantillons d’essai devraient être semblables, l’effet net de la turbidité serait négligeable.

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17. Maîtrise de la qualité
Document source	Toxique de référence	Sédiment témoin ?	Critère de validité de l’essai de toxicité du sédiment
EC 1992	phénol, zinc, bichromate de potassium, laurylsulfate de sodium	oui^{Note de la table a.17}	Estimation numérique valide de la CIp, d’après les concentrations présentant une inhibition de la luminescence inférieure et supérieure à l’inhibition correspondant à la CIp.
MICROBICS 1992	phénol, zinc	n. p.^{Note de la table b.13}^,^{Note de la table c.12}	n. p.^{Note de la table b.13}
MICROBICS 1995a	n. p.^{Note de la table b.13}	n. p.^{Note de la table b.13}	Si la valeur gamma de chaque solution fille est supérieure à 1, il faut reprendre l’essai en utilisant moins de 7 g dans la solution mère.
ASTM 1995	phénol, zinc	oui (ce peut être le sédiment de référence)	Si l’écart-type de la lecture de la luminescence dans trois solutions témoins s’écarte d’environ 12 % de la moyenne, on devrait considérer l’essai comme inacceptable^{Note de la table d.10}.
EC 1996a	n. p.^{Note de la table b.13}	n. p.^{Note de la table b.13}	n. p.^{Note de la table b.13}
AZUR 1997	n. p.^{Note de la table b.13}	n. p.^{Note de la table b.13}	n. p.^{Note de la table b.13}^,^{Note de la table e.10}
AZUR 1998a	n. p.^{Note de la table b.13}	n. p.^{Note de la table b.13}	n. p.^{Note de la table b.13}^,^{Note de la table e.10}
AZUR 1998b	n. p.^{Note de la table b.13}	n. p.^{Note de la table b.13}	n. p.^{Note de la table b.13}
EC 1999a	sédiment étalon HS-6	sédiment « non contaminé » du banc Roberts	Les CI 50 correspondant à un sédiment « non contaminé » et au sédiment HS-6 se trouvent à l’intérieur de la zone de confiance (± 2 σ) des cartes de contrôle établies respectivement pour ces deux sédiments.
NICMM 1999	zinc	oui^{Note de la table a.17}	Sulfures de l’eau de porosité : < 16,5 mg/L ; pH de l’eau de porosité : 6,5-7,5 (± 0,5) ; salinité de l’eau de porosité : > 8 ‰ ; CE 50 du toxique de référence (ZnSO₄) à l’intérieur de la zone délimitée par ± 3 σ de la carte de contrôle ; CE 50 du sédiment témoin : < 1 000 unités de toxicité.

Notes de la table

Notes de bas de page a.17

L’essai exige l’emploi d’au moins un échantillon de sédiment témoin ou de sédiment de référence (« non contaminé »).

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Notes de bas de page b.13

n. p. = non précisé.

Retour à la référence de la note de bas de pageb.13

Notes de bas de page c.12

Ce mode opératoire fait allusion à des « échantillons témoins » ; cependant, ceux-ci sont décrits comme des « échantillons provenant des parages », qui pourraient présenter une toxicité « naturellement très élevée » (cette description correspond donc à la notion d’échantillon de référence).

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Notes de bas de page d.10

Il est recommandé d’utiliser un toxique de référence pour valider les données obtenues avec différents lots de réactif (c’est-à-dire différents lots de bactéries lyophilisées) ou pour les lots utilisés pendant une longue période.

Retour à la référence de la note de bas de paged.10

Notes de bas de page e.10

Si la valeur de gamma correspondant à chaque solution fille est supérieure à 1,0, on pourrait devoir répéter l’essai en utilisant moins de 7 g dans la solution mère (voir le tableau 5 de la présente annexe). Inversement, si la valeur gamma correspondant à chaque concentration de solution fille est inférieure à 1,0, on pourrait devoir répéter l’essai en utilisant plus de 7 g dans la solution mère.

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Annexe F : Fiche de laboratoire employée pour les essais de toxicité des sédiments employant V. fischeri

Projet :
Méthode d’essai :					Analyste :
Lot de réactif :					Date de péremption :
Date de l’essai	Nom de fichier et/ou d’échantillon	Date de prélèvement sur le terrain	Date de réception au laboratoire	Temp. à l’arrivée (°C)	Heure de recons. du réactif^{Note de la table a.18}	Heure du début de l’essai	Notes^{Note de la table b.14}

Notes de la table

Notes de bas de page a.18

Délai de reconstitution du réactif bactérien.

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Notes de bas de page b.14

Précisions sur les paramètres tels que la couleur de l’échantillon, son odeur et ses manipulations (p. ex. tri ou tamisage de l’échantillon, espèces éliminées, taille des ouvertures du tamis-presse, problèmes, modifications).

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Date de modification :: 2014-09-09

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Méthode d’essai biologique servant à déterminer la toxicité des sédiments à l’aide d’une bactérie luminescente : chapitre 11

Annexes

Annexe A : Méthodes d’essai biologique et guides à l’appui publiés par la Section de l’élaboration et de l’application des méthodes d’Environnement Canada^{Note de bas de page 18}

Annexe B : Composition du Groupe intergouvernemental de la toxicité aquatique (avril 2002)

Administration fédérale (Environnement Canada)

Administration fédérale (Pêches et Océans Canada)

Provinces

Annexe C : Adresses de l’administration centrale et des bureaux régionaux d’Environnement Canada

Annexe D : Membres du Groupe consultatif scientifique

Membres du Groupe

Autorité scientifique

Consultants

Annexe E : Variantes du mode opératoire des essais de toxicité de sédiments en phase solide employant des bactéries luminescentes et décrites dans les méthodes canadiennes, états-uniennes et néerlandaises

Annexe F : Fiche de laboratoire employée pour les essais de toxicité des sédiments employant V. fischeri

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Annexe A : Méthodes d’essai biologique et guides à l’appui publiés par la Section de l’élaboration et de l’application des méthodes d’Environnement CanadaNote de bas de page 18

Annexe B : Composition du Groupe intergouvernemental de la toxicité aquatique (avril 2002)

Administration fédérale (Environnement Canada)

Administration fédérale (Pêches et Océans Canada)

Provinces

Annexe C : Adresses de l’administration centrale et des bureaux régionaux d’Environnement Canada

Annexe D : Membres du Groupe consultatif scientifique

Membres du Groupe

Autorité scientifique

Consultants

Annexe E : Variantes du mode opératoire des essais de toxicité de sédiments en phase solide employant des bactéries luminescentes et décrites dans les méthodes canadiennes, états-uniennes et néerlandaises

Annexe F : Fiche de laboratoire employée pour les essais de toxicité des sédiments employant V. fischeri

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