Guide technique des mines de métaux : tableau d’évaluation de toxicité sublétale, chapitre 6


Tableau d’évaluation de rapport pour les programmes des Pâtes et Papiers et Mines de Métaux: Essai de reproduction et de survie sur le cladocère Ceriodaphnia dubia*

Identification de l’échantillon d’effluent

Nom/Adresse du client: _______________

 Nom/Adresse du lab. d’essai: ________________

Instructions pour compléter le tableau

Exigences pour le rapport et l’essai ; exigences des ESEE
Exigences pour le rapport et l’essai ; exigences des ESEE Données consignées? Exigences obligatoires rencontrées?
O N O N NA
Échantillon d’effluent
Type d’effluent (c.-à-d., effluent de procédé, effluent final, etc.)         X
Information sur l’étiquetage/codage de l’échantillon         X
Température de l’échantillon à son arrivée au laboratoire         X
Date(s) du prélèvement et date(s)/heure(s) de réception au laboratoire         X
Date d’utilisation de chaque échantillon dans l’essai (≤ 3 jours après la fin du prélèvement)2          
Organismes soumis à l’essai
Espèce (Ceriodaphnia dubia)          
Source (élevages issus d’une seule génitrice pour obtenir les organismes del’essai)          
Age au début de l’essai (néonates âgées < 24h et toutes nées dans un intervallede 12h)          
Tout aspect, comportement ou traitement inhabituel des organismes avant leur utilisation dans l’essai         X
Critères de santé
% moyen de mortalité dans les élevages individuels pendant les 7j ayant précédé l’essai (pas plus de 20% de mortalité)          
# moyen de jeunes vivants qui ont été produits par adulte dans les élevages individuels au cours des 7j ayant précédé l’essai (au moins 15 jeunes, enmoyenne au cours des 3 premières couvées)          
Les néonates utilisées pour le démarrage d’un essai doivent provenir exclusivement des élevages individuels comptant au moins 8 jeunes issus de la troisième couvée ou d’une couvée subséquente          
Des éphippies ne doivent pas être présentes dans l’élevage          
Installations et conditions de l’essai
Méthode d’essai (SPE 1/RM/21, deuxième édition, février 2007)          
Solution d’essai renouvelée à des intervalles ≤24 hres durant la période d’essai          
Dates ou jours de l’utilisation des sous-échantillons ou des échantillons multiples lors de l’essai (c.-à-d., jours 1-2; jours 3-4; jours 5-6-7)          
Date de la fin de l’essai (lorsque l’un des deux événements suivants survient :lorsque 60 % ou plus des daphnies de la première génération dans les solutions témoins ont produit 3 couvées, ou au terme d’une période de 8 jours)          
Description des récipients d’essai (taille, forme, type de matériau)         X
Personne ayant mené l’essai         X
Débit de pré-aération des solutions, si effectuée, avant l’addition des organismes de l’essai (ne dépassant pas 100 bulles/min par récipient d’essai; minimal et contrôlé)          
Durée de pré-aération (seulement si O.D. de la solution d’essai < 40% ou >100% à la préparation, pré-aérer alors toutes les solutions pour la plus courte période detemps entre 20 min et l’atteinte de 40% de saturation dans la conc. d’essai la plus élevée; l’essai doit être mis en route par la suite qu’on ait obtenu ou non une mesure d’O.D de 40-100%)          
Débit/durée d’aération, si effectuée, pendant l’exposition des organismes (normalement sans aération; ne dépassant pas 100 bulles/min par récipient d’essai; minimal et contrôlé)          
Procédure, s’il y a lieu, d’ajustement du pH (recommande aucun ajustement si le pHde la solution d’essai est entre 6,5 - 8,5; à l’extérieur de cet intervalle, l’ajustement du pH est une option ou la conduite d’essais parallèles avec et sans ajustement de pH)         X
Procédure, s’il y a lieu, de filtration de l’échantillon (recommande aucune filtration; siorganismes indigènes, filtrer (maille de 60 µm) avant utilisation pour l’essai) ou d’ajustement de la dureté (recommande aucun ajustement)          
Type(s) et source(s) de l’eau utilisée comme eau témoin/dilution (même eauutilisée pour la préparation des solutions témoins et des solutions d’essai; ajustée à 25 ± 1°C avant usage; non sursaturée)          
Type et quantité de tout produit chimique ajouté à l’eau témoin/dilution         X
Échantillon/sous-échantillon ajusté à 25 ± 1°C avant utilisation          
# et conc. des solutions d’essai (≥ 7 conc. et un témoin)          
Volume et profondeur de solution à l’intérieur de chaque récipient d’essai (volume ≥15 mL)          
# de répétitions par conc. (# égal de répétitions; ≥ 10 répétitions/conc.)          
Deuxième témoin utilisant la source d’eau d’élevage mis sur pied si une eau autre que celle utilisée pour l’élevage est utilisée en tant qu’eau témoin/ de dilution (est- ce qu’un deuxième témoin a été mis sur pied?)          
# d’organismes (1 néonate/récipient; # égal de néonates pour tous lestraitements)          
O.D. et pH de l’échantillon avant son utilisation         X
Température, O.D. et pH des solutions d’essai et témoin (mesurés au moins audébut et à la fin (avant le renouvellement des solutions) de chaque période d’exposition de 24h dans les conc. représentatives; température 25 ± 1°C)          
Toute anomalie dans le déroulement de l’essai, toute modification apportée à laméthode, tout problème observé et toute mesure corrective prise         X
Paramètres de mesure et calculs
% moyen de mortalité de la première génération de daphnies dans chaque solution d’essai (et témoin) à chaque période d’observation et à la fin de l’essai (test nonvalide si la mortalité dans les témoins > 20%, en tout temps)          
# moyen de néonates (+ ET) par première génération de daphnies dans chaque solution d’essai (et témoin), pendant les trois premières couvées seulement(l’essai est non valide si ≥ 60% des témoins n’ont pas produit 3 couvées à l’intérieur de 8 j et si la reproduction chez les témoins est, en moyenne, inférieure à 15 jeunes vivants par adulte ayant survécu lorsque 60 % ou plus des adultes ont produit leur troisième couvée. Prenez note :  deux néonates ou plus présentes une journée quelconque de l’essai dans une enceinte expérimentale constituent une couvée, lorsqu’une néonate seulement a été observée et comptée dans une enceinte expérimentale donnée contenant l’eau témoin et qu’une néonate au moins a été observée dans la même enceinte le jour précédant ou le jour suivant, cette néonate doit faire partie du dénombrement du jour précédent ou du jour suivant) ; pour chaque répétition et chaque traitement (y compris le témoin), aucune néonate de la quatrième couvée ou de couvées subséquentes ne doit être incluse dans le nombre total de néonates qui y ont été produites au cours de l’essai          
Si l’eau du milieu récepteur est utilisée comme eau témoin/de dilution, la mortalité et la reproduction pour C. dubia présent dans 10 solutions répétées d’eau d’élevage comparées à celles des organismes d’essai présents dans les 10 solutions répétées d’eau du milieu récepteur          
CL50 (et limites de confiance à 95%) pour la survie; méthode statistique utilisée          
CI25 (et limites de confiance à 95%) pour la reproduction; une indication que l’analyse de régression a été utilisée (ICPIN peut être appliqué seulement si la reproduction ne peut faire l’objet d’une analyse de régression); le nom du ou des programmes et des méthodes employés pour calculer les paramètres statistiques, de même que des renvois à ces programmes et méthodes ;  les détails relatifs à toute technique de pondération appliquée aux données          
Les paramètres calculés au moyen d’une analyse de régression doivent être encadrés par les concentrations d’essai; l’extrapolation des paramètres au- delà de la concentration expérimentale maximale ne constitue pas une pratique acceptable          
Les valeurs aberrantes ainsi que la justification de leur suppression         X
Résultats et durée d’essais avec toxiques de référence (recommande à l’intérieurdes limites de contrôle (± 2 ET) établies lors du diagramme de contrôle du produit)          
Est-ce que l’ essai avec toxique(s) de référence a été effectué dans les 14 jours qui précèdaient ou suivaient la date du début de l’essai de toxicité, ou durant celui-ci ?          
Est-ce que l’essai avec toxique(s) de référence a été effectué avec les mêmes procédures et conditions d’essai?          
Exigences spécifiques des programmes des ESEE
Est-ce que des résultats quantitatifs pour l’essai avec l’échantillon d’eau usée et l’essai avec toxique de référence ont été fournis (pas de résultats < X v/v %) ?          
Est-ce que les résultats calculés ont été encadrés par les concentrations d’essai (à l’exception de « >100% ») ? - -      
Pour le programme ESEE des pâtes et papiers: rapport soumis à l’intérieur de 90 j après la fin de l’essai? - -      

* Comprend les exigences relatives au procès-verbal (rapport) et à la conduite de la méthode indiquées dans l’essai de reproduction et de survie du cladocère Ceriodaphnia dubia, modifiée en 2007, ainsi que celles citées dans le Règlement modifiant le Règlement sur les effluents des fabriques de pâtes et papiers et l’annexe 5 du Règlement sur les effluents des mines de métaux (juin 2002).

1 Pour plus d’informations sur la date du début de l’essai, consulter la section 7.4 du Guide pour l’étude du suivi des effets sur l’environnement aquatique par les mines de métaux et la section 6.3 du Guide technique pour l’ESEE par les fabriques de pâtes et papiers.

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