Guide technique des mines de métaux : tableau d’évaluation de toxicité sublétale, chapitre 7
Identification de l’échantillon d’effluent
Nom/Adresse du Client: _____________
Nom/Adresse du lab. d’essai: _____________
Instructions pour compléter le tableau
- Les exigences concernant le rapport et l’essai sont citées à la 1re colonne (incluant le l’annexe 5 du Règlement sur les effluents des mines de métaux). Les exigences relatives au rapport apparaissent en caractères réguliers tandis que les exigences obligatoires relatives à l’essai sont en caractères gras.
- A la 2e colonne, cochez sous le O si les données ont été consignées dans le rapport ou sous le N si tel n’est pas le cas.
- Pour la colonne 3, l’information consignée peut correspondre soit à des exigences minimales pour le rapport soit à des renseignements requis par les programmes ESEE pour évaluer si les exigences obligatoires ont été rencontrées. Si les données consignées rencontrent les exigences obligatoires spécifiées, cochez sous le O à la 3e colonne ou sous le N si tel n’est pas le cas. Les items ne se rapportant pas aux exigences obligatoires vis-à- vis de l’essai ou des ESEE ont été préalablement codés par un X sous le Na.
Exigences pour le rapport et l’essai ; exigences des ESEE | Données consignées? | Exigences obligatoires rencontrées? | |||
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O | N | O | N | NA | |
Échantillon d’effluent | |||||
Type d’effluent (c.-à-d., effluent de procédé, effluent final, etc.) | X | ||||
Information sur l’étiquetage/codage de l’échantillon | X | ||||
Température de l’échantillon à son arrivée au laboratoire | X | ||||
Mesure du pH de l’échantillon avant sa préparation et son utilisation dans l’essai | X | ||||
Date du prélèvement et date/heure de réception au laboratoire | X | ||||
Date d’utilisation de chaque échantillon dans l’essai (≤ 3 jours après la fin du prélèvement)1 | |||||
Organismes soumis à l’essai | |||||
Espèce (Lemna minor; code d’identification du clone 8434 ou 7730) | |||||
Origine de la culture (collection de laboratoire public ou privé, fournisseur commercial); (si les plantes proviennent de l’extérieur, elles doivent êtrecultivées pendant ≥ 3 semaines avant d’être utilisées) | |||||
Culture stérile (Culture axénique) | |||||
Milieu d’essai (c.-à-d., milieu stérile E+ de Hoagland modifié pour les essaisavec les eaux usées ou l’eau réceptrice) | |||||
Age de la culture (7-10 jours); période d’acclimatation dans le milieu d’essai(18 à 24 h; ≥2 cm de milieu d’essai frais) avant l’essai; (deux plantes à 3 thalles) transférées au hasard dans chaque récipient d’essai (c.-à-d., un total de 6 thalles/récipient) | |||||
Noter tout aspect ou traitement inhabituels de la culture d’essai, avant sonemploi dans l’essai | X | ||||
Critère de santé | |||||
Le nombre de thalles doit s’être multiplié par ≥ 8 fois (c.-à-d., ≥24 thalles)après 7 jours, dans le même milieu d’essai préparé pour surveiller la santé des cultures | |||||
Installations et conditions de l’essai | |||||
Méthode d’essai (SPE 1/RM/37, deuxième édition, janvier 2007) | |||||
Type d’essai (statique ou avec renouvellement intermittent); fréquence de renouvellement des solutions (au moins à tous les 3 jours pour un essai àrenouvellement intermittent) | |||||
Date de fin d’essai et mention de sa durée (7 jours) | |||||
Nom et adresse du laboratoire d’essai; nom de la ou des personne(s) ayanteffectué l’essai | X | ||||
Type de récipients d’essai (assez large pour éviter que les thalles serecouvrent à la fin de l’essai dans les solutions de témoins); ≥ 100 mL de solution d’essai), préférablement 150 mL; couverts; profondeur minimale de 4 cm de solution; description des récipients (taille, forme, type de matériau) | |||||
Eau témoin/de dilution | |||||
Type de milieu d’essai utilisé comme eau témoin/ de dilution (doit être la même eau); soit : milieu de croissance APHA modifié pour l’essai d’eaux usées et d’eau réceptrice, milieu de croissance SIS ou Steinberg pour l’essai de produits chimiques, ou un échantillon d’eau réceptrice enrichie des mêmes nutriments utilisés pour préparer le milieu d’essai (avec un témoin additionnelcomprenant le milieu d’essai et l’eau de dilution de la culture) | |||||
Type et source d’eau utilisée pour préparer le milieu d’essai | X | ||||
Type et quantité de produit(s) chimique(s) utilisé(s) pour préparer l’eautémoin/de dilution | X | ||||
Conditions et procédures d’essai | |||||
≥ 3 répétitions (c.-à-d., 6 thalles/répétition) par concentration plus les témoins (pour l’essai à concentration unique); ou ≥ 4 répétitions par concentration plus les témoins (pour l’essai à concentrations multiples avec un nombre identique pour chaque concentration incluant les témoins); le nombre de répétitions peut varier selon les traitements (6 répétitions pour le ou les témoins, 4 répétitions pour les 3-5 concentrations d’essai les plus basses, 3 répétitions pour les 4-5 concentrations d’essai les plus élevées); répétitions placées au hasard dans l’aire d’essai | |||||
Nombre de concentrations d’essai (minimum ≥ 7, plus les témoins) | |||||
Aucune filtration pour les échantillons d’eau usée, sauf si des algues sont présentes; on doit passer les échantillons d’eau réceptrice ou les échantillonsd’eau usée mêlés à de l’eau réceptrice sur un filtre en fibre de verre (taille des pores ~1 µm); passage supplémentaire facultatif sur filtre à ouvertures de 0,22µm (on doit utiliser la même procédure si l'eau réceptrice est utilisée comme eau de dilution avant d'ajouter les nutriments) | |||||
Type et quantité de nutriments ajoutés aux échantillons d’essai, avant le débutde l’essai | X | ||||
Durée de pré-aération (20 min) et débit minimal (100 bulles/min) | |||||
Procédure, le cas échéant, d’ajustement du pH (aucun ajustement si le pH des solutions d’essai est entre 6,5 et 9,5) | X | ||||
Essai statique - pH: (pH de l’échantillon au début (Jour 0) et à la fin (Jour 7) de l’essai, au moins dans les concentrations supérieure, inférieure et médiane, et dans le ou les témoins) | |||||
Essai avec renouvellement intermittent - pH: (pH de l’échantillon au début (Jour 0) et à la fin (Jour 7) de l’essai, ainsi qu’avant et après le renouvellement des solutions dans les concentrations supérieure, inférieure et médiane, et dans le ou les témoins) | |||||
Température journalière (eau d’essai réglée à 25 ± 2 °C avant l’essai; pas dethermo-plongeurs). Au minimum mesurée quotidiennement dans les concentrations supérieure, inférieure et médiane, et dans le(s) témoin(s) | |||||
Éclairage: continu (fluorescent or équivalent); débit de fluence photonique: 64 à 90 μmol/(m2 •s) à la surface du milieu d’essai; écart maximal de 15 % (54-104 μmol/(m2 •s)) dans l’ensemble de la zone d’essai; (fluence photonique mesurée en plusieurs points de la surface du milieu, à au moins une reprise durant l’essai, et à la hauteur où se trouvent les thalles dans le milieu d’essai) | |||||
Toute anomalie dans le déroulement de l’essai, tout problème observé et toute mesure corrective prise | X | ||||
Observations et mesures | |||||
Le nombre et l’aspect des thalles dans chaque récipient d’essai (incluant les témoins), selon les notes prises pendant chaque période d’observation aucours des sept journées d’exposition | |||||
Pour chaque traitement, y compris le ou les traitements témoins, l’augmentation moyenne (± ET) du nombre de thalles, déterminée à la fin de l’essai (l’augmentation pour le(s) témoins doit être ≥ 8 fois, c.-à-d. ≥ 48 thalles) | |||||
Pour chaque traitement, y compris le ou les traitements témoins, la masse sèche moyenne (± ET) des thalles, déterminée à la fin de l’essai | |||||
Autres observations, le cas échéant (c.-à-d., chlorose, nécrose, thalles d’aspect brun ou blanc, jaune ou d’une taille anormale, gibbosité, destruction de lacolonie, destruction des radicelles, réduction de la flottabilité, ou autres) | X | ||||
Paramètres de mesure et calculs | |||||
Les concentrations nominales des solutions corrigées en fonction du volume de solution mère nutritive sont rapportées comme concentrations d’essai (c.-à-d., il n’y a pas une concentration de 100%) | |||||
Nombre de thalles: (CI25 et limites de confiance à 95%);obtenue au moyen de concentrations dont le volume a été corrigé pour tenir compte de l’ajout de solution mère nutritive; une indication que l’analyse de régression a été utilisée (ICPIN peut être appliqué seulement si l’augmentation du nombre de thalles ne peut faire l’objet d’une analyse de régression); le nom du ou des programmes et des méthodes employés pour calculer les paramètres statistiques, de même que des renvois à ces programmes et méthodes ; les détails relatifs à toute technique de pondération appliquée aux données | |||||
Poids sec des thalles: (CI25 et limites de confiance à 95%); obtenue au moyen de concentrations dont le volume a été corrigé pour tenir compte de l’ajout de solution mère nutritive; une indication que l’analyse de régression a été utilisée (ICPIN peut être appliqué seulement si l’augmentation du poids sec des thalles ne peut faire l’objet d’une analyse de régression); le nom du ou des programmes et des méthodes employés pour calculer les paramètres statistiques, de même que des renvois à ces programmes et méthodes ; les détails relatifs à toute technique de pondération appliquée aux données | |||||
Les paramètres calculés au moyen d’une analyse de régression doivent être encadrés par les concentrations d’essai; l’extrapolation des paramètres au-delà de la concentration expérimentale maximale ne constitue pas une pratique acceptable | |||||
Les données relatives à une hormèse peuvent être saisies directement puisque tous les points de données peuvent être pris en compte et incorporées dans le modèle de régression; il n’y a aucun équeutage des points de données indiquant une réponse hormétique (c.-à-d., une stimulation ou une réponse « supérieure à celle du témoin » ne se produisant que lors d’une exposition à des concentrations faibles) | |||||
Les valeurs aberrantes ainsi que la justification de leur suppression | X | ||||
Toute stimulation appréciable de la croissance, exprimée en pourcentage de stimulation (nombre de thalles ou la masse sèche), à quelque concentration que ce soit | |||||
Résultats et durée de l’essai avec toxique(s) de référence, moyenne géométrique ± 2 ET2 (pour même espèce, clone, milieu d’essai et récipient d’essai) | |||||
Est-ce que l’essai avec toxique(s) de référence a été effectué dans les 14 jours qui précèdaient ou suivaient la date du début de l’essai de toxicité, ou durant celui-ci ? | |||||
Est-ce que l’essai avec toxique de référence a été effectué avec la même culture et les mêmes procédures et conditions d’essai? | |||||
Quel est le type de toxique de référence utilisé (Ni ou KCl sont recommandés) ? | |||||
Exigences spécifiques au programme des ESEE | |||||
Est-ce que des résultats quantitatifs pour l’essai avec l’échantillon d’eau usée et l’essai avec toxique de référence ont été fournis (pas de résultats < X v/v %) ? | - | - | |||
Est-ce que les paramètres statistiques calculés ont été encadrés par les concentrations d’essai (à l’exception de « >97% ») ? | - | - |
* Inclut les exigences relatives au rapport et à la méthodologie, telles que décrites dans la méthode d’essai d’inhibition de la croissance de la plante macrophyte Lemna minor, modifiée en 2007.
1 Pour plus d’informations sur la date du début de l’essai, consulter la section 7.4 du Guide pour l’étude du suivi des effets sur l’environnement aquatique pour les mines de métaux.
2 Il y a une erreur dans la deuxième édition de janvier 2007. À la section 8.1.7. Résultats, au sixième point, le texte indique «…la moyenne géométrique (+/-ET) ... ». Prendre note qu'il faudrait plutôt lire «…la moyenne géométrique (+/-2ET)... ».
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