Lignes directrices sur les exigences en matière d’efficacité pour les biocides : Désinfection et assainissement des surfaces dures

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Types d'allégations

En général, il existe deux types d'allégations biocides :

Les allégations directes montrent une relation de cause à effet. Ces allégations exigent des renseignements sur l'efficacité qui démontrent que votre biocide est efficace contre des micro-organismes particuliers. Un exemple d'allégation directe serait « Ce biocide tue le SRAS-CoV-2 (le virus qui cause la COVID-19) ».

Les allégations indirectes montrent une relation et ne sont acceptées que pendant une pandémie déclarée par l'Organisation mondiale de la Santé (OMS). Ces allégations vous permettent de fournir à Santé Canada des résultats d'essai d'efficacité obtenus à l'aide d'un autre micro-organisme qui est semblable ou plus difficile à tuer que le micro-organisme proposé. Un exemple d'allégation indirecte serait « Ce biocide tue le rhinovirus de type 16 et est susceptible de tuer le SRAS-CoV-2 (le virus qui cause la COVID-19) ».

Si les données d'essai sur votre biocide permettent d'étayer à la fois une allégation directe et une allégation indirecte, seule l'allégation directe devrait figurer sur l'étiquette.

Renseignez-vous sur les allégations concernant les agents pathogènes émergents.

Allégations générales

Avant de proposer une allégation générale pour votre biocide, vous devriez d'abord démontrer si votre biocide est un biocide général (à large spectre) ou pour hôpitaux et établissements de soins de santé. Cela s'applique aux allégations de destruction (tuer), d'inactivation ou de réduction ou de contrôle du nombre de :

Pour proposer une allégation particulière d'assainissement de surface sans contact avec les aliments, vous devriez démontrer que votre biocide est un assainisseur général de surface sans contact avec les aliments. Il en va de même pour les allégations particulières d'assainissement des surfaces entrant en contact avec les aliments.

Les laboratoires peuvent signer électroniquement les essais à l'appui de votre demande de biocide. Cela comprend les rapports d'efficacité contenant des énoncés de bonnes pratiques de laboratoire (BPL).

Allégations de désinfectant pour surface dure

Les désinfectants peuvent détruire ou inactiver de façon irréversible des micro-organismes pathogènes (causant des maladies) et potentiellement pathogènes (opportunistes), mais pas nécessairement des spores bactériennes, sur des surfaces dures. Cela est dû à l'action antimicrobienne des ingrédients actifs.

Les désinfectants de surface dure contre les bactéries devraient montrer qu'ils sont efficaces 10 minutes après l'application ou avant.

Désinfection limitée, générale (à large spectre) et hôpitaux ou établissements de soins de santé

Pour les allégations de désinfectant limité, général (à large spectre) et de désinfectant pour hôpitaux ou établissements de soins de santé, nous exigeons :

Les exigences en matière d'essais pour les désinfectants limités, généraux (à large spectre) et les désinfectants pour hôpitaux et établissements de soins de santé sont énumérées au tableau 3.

Utilisez les méthodes appropriées pour tester les bactéries principales suivantes pour étayer les allégations de désinfection (par exemple, les méthodes d'utilisation avec dilution pour les biocides liquides, AOAC 961.02 pour les biocides pulvérisés et AOAC 961.02 modifié ou ASTM E2362 pour les biocides sous forme de lingettes à usage unique):

Vous devriez effectuer les essais sur chacun des 3 lots pour Pseudomonas aeruginosa et Staphylococcus aureus à des jours différents lorsque vous utilisez les méthodes d'utilisation avec dilution.

Les allégations relatives aux bactéries vous permettent d'étiqueter votre biocide comme « bactéricide ». Vous devriez fournir des données d'efficacité pour montrer les différents niveaux d'efficacité de votre biocide.

Tableau 3 : Désinfection bactérienne des surfaces dures
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, supports par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Exigences de base relatives aux analyses bactériologiques
Désinfectant limité (efficace contre les bactéries à Gram positif ou Gram négatif, mais pas les deux)

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)Note de bas de page 1

Poudres hydrosolubles

AOAC 955.14, 955.15 (utilisation avec dilution)

Salmonella enterica (anciennement Salmonella choleraesuis) (ATCC 10708)

ou

Staphylococcus aureus (ATCC 6538)

3 lots à la LIC

60 supports par lot

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur

Sauf mention contraire

AOAC,
méthodes d'utilisation avec dilution :

S. enterica : 1,0 x 105 à 1,0 x 106 UFC par support (densité moyenne minimale de 5 log10)

Pour S. aureus et P. aeruginosa, chaque lot devrait être testé un jour différent : 1,0 x 106 à 1,0 x 107 UFC par support (densité moyenne minimale de 6 log10)

AOAC 961.02 et méthodes avec lingettes :

S. enterica : 1,0 x 104 à 3,2 x 105 UFC par support (densité moyenne minimale de 4 log10)

S. aureus et P. aeruginosa : 1,0 x 105 à 3,2 x 106 UFC par support (densité moyenne minimale de 5 log10)

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur, par lot et au temps de contact proposé

Sauf mention contraire :

Méthode d'essai AOAC 955.14 sur S. enterica : 59/60 supports négatifs pour la croissanceNote de bas de page 2

Méthode d'essai AOAC 955.15
sur S. aureus : 57/60 supports négatifs pour la croissance par lot

Méthode d'essai AOAC 964.02 contre P. aeruginosa : 54/60 supports négatifs pour la croissance par lot

Méthode d'essai AOAC 961.02utilisant des lingettes : 59/60 supports négatifs pour la croissance par lot

Pulvérisation AOAC 961.02
Lingettes à usage unique

AOAC 961.02 modifiée

ASTM E2362

Désinfectant général (à large spectre) (efficace contre les Gram positifs et les Gram négatifs)

Liquides (chiffon, serpillière, immersion) Note de bas de page 1
Poudres hydrosolubles

AOAC 955.14
955.15
964.02

(utilisation avec dilution)

Staphylococcus aureus
(ATCC 6538)

et

Salmonella enterica (anciennement Salmonella choleraesuis) (ATCC 10708)

ou

Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442)

Pulvérisation AOAC 961.02
Lingettes à usage unique

AOAC 961.02 modifiée

ASTM E2362

Désinfectant pour les hôpitaux et les établissements de soins de santéNote de bas de page 2 (efficace contre les Gram positifs et les Gram négatifs)

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)Note de bas de page 1

Poudres hydrosolubles

AOAC 964.02, 955.15 (utilisation avec dilution)

Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442)

et

Staphylococcus aureus (ATCC 6538)

Pulvérisation AOAC 961.02
Lingettes à usage unique

AOAC 961.02 modifiée

ASTM E2362

Exigences relatives aux bactéries additionnelles
Allégation contre une bactérie additionnelle (non sporulante)

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)Note de bas de page 1

Poudres hydrosolubles

Méthode d'utilisation de dilution de l'AOAC

Bactérie spécifique déclarée sur l'étiquette en plus de l'allégation de désinfectant général (à large spectre) ou de désinfectant pour les hôpitaux ou les établissements de soins de santé

Bactérie spécifique du même type Gram que la souche utilisée pour supporter l'allégation de désinfection limitée (par exemple, lorsque S. aureus a été utilisé pour supporter l'allégation de désinfection limitée, uniquement des bactéries Gram positif supplémentaires peuvent être ajoutées)

2 lots à la NCL (composés séparément, par organisme d'essai représentatif)

10 supports par lot

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur

Sauf mention contraire :

1,0 x 104 à 1,0 x 105 UFC par support

Sauf mention contraire :

10/10 supports négatifs pour la croissance par lot au temps de contact proposé

Pulvérisation AOAC 961.02
Lingettes à usage unique

AOAC 961.02 modifiée

ASTM E2362

Données de confirmation de l'efficacité exigées pour la désinfection des bactéries
Désinfectant limité

Se reporter aux exigences de bases relative à la bactérie principale
Analyse de bactéries supplémentaires non requise

2 lots à la LIC

10 supports par lot

Mêmes exigences que pour la bactérie principale

Sauf mention contraire :

10/10 supports négatifs pour la croissance par lot au temps de contact proposé

Désinfectant général (à large spectre)

Se reporter aux exigences de bases relatives aux bactéries principales
Analyse de bactéries supplémentaires non requise

2 lots à la LIC

10 supports par lot

Mêmes exigences que pour les bactéries principales

Sauf mention contraire :

10/10 supports négatifs pour la croissance par lot au temps de contact proposé

Désinfectant pour les hôpitaux ou les établissements de soins de santé

Se reporter aux exigences de bases relatives aux bactéries principales
Analyse de bactéries supplémentaires non requise

2 lots à la LIC

10 supports par lot

Mêmes exigences que pour les bactéries principales

Sauf mention contraire :

10/10 supports négatifs pour la croissance par lot au temps de contact proposé

Abréviation :

UFC
unité formant une colonie
Note de bas de page 1

La méthode d'utilisation avec dilution est également acceptable pour les biocides par pulvérisation et sans pulvérisation et pour les biocides qui contiennent des ingrédients non volatils.

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Note de bas de page 2

Si testé le même jour, la norme de rendement 59/60 devrait être respectée. Si les lots sont testés à des jours différents, une norme de rendement 58/60 sera également envisagée, conformément à l'exigence de l'EPA des États-Unis décrite dans la PON MB-05.

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Note de bas de page 3

Pour les produits destinés à être appliqués à l'aide d'un pulvérisateur électrostatique, veuillez vous référer à la version la plus récente du document Instructions for Adding Electrostatic Spray Application Directions for Use to Antimicrobial Product Registrations de l'EPA des États-Unis (en anglais seulement). Les données soumises doivent être en conformité avec les BPL.

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Désinfection des mycobactéries

Vous aurez besoin de données d'efficacité contre une espèce représentative de mycobactérie pour pouvoir déclarer votre biocide comme étant un :

Une espèce représentative pourrait être Mycobacterium bovis BCG (ATCC 35473) ou Mycobacterium terrae (ATCC 15755). Le choix de l'espèce de mycobactérie appropriée dépend de la méthode d'essai utilisée (par exemple, M. terrae n'a été validé qu'avec certaines méthodes d'essai, telles que la méthode quantitative sur support ASTM 2197 et la méthode quantitative de l'OECD).

Pour faire des allégations spécifiques contre certaines mycobactéries, vous devez fournir des données d'efficacité à l'appui.

N'incluez des allégations spécifiques (par exemple, efficace contre ou tue Mycobacterium fortuitum) sur votre étiquette que si vous :

Si des composés d'ammonium quaternaire sont les seuls ingrédients actifs dans votre biocide, vous devriez effectuer des essais de vérification pour confirmer l'allégation de mycobactéricide figurant sur l'étiquette. Pour ce faire, vous devez tester 1 des lots de biocides originaux en utilisant les mêmes procédures d'essai et dans les mêmes conditions. Les tests doivent être effectués :

Tableau 4 : Désinfection des mycobactéries sur les surfaces dures
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, supports par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Exigences de base des essais sur les mycobactéries
Mycobactéricide et tuberculocide

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)Note de bas de page 1

Poudres hydrosolubles

AOAC 965.12 US EPA Quantitative Tuberculocidal Test Method (QTB)Note de bas de page 2 Le choix de l’espèce de mycobactérie appropriée dépend de la méthode d’essai :

Mycobacterium bovis (BCG) (ATCC 35743)

ou
Mycobacterium terrae
(ATCC 15755)

2 lots à la LIC

10 supports par lot

Pour la méthode
QTB :
4 réplicats par lot

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur

Sauf mention contraire :

Méthode
QTB : 1 x 107 à 1 x 108 UFC par ml

Méthode d'essai sur support : 1 x 104 à 1,0 x 106 UFC par support

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur et au temps de contact proposé

Sauf mention contraire :

Méthode d'essai sur support : 10/10
supports négatifs pour la croissance par lot au temps de contact spécifié, aucune croissance dans les milieux de sous-culture inoculés

Avec la méthode QTB : chacun des quatre réplicats devrait démontrer une élimination supérieure ou égale à 1,0 x 104 UFC (élimination supérieure ou égale à 4,0 log10, réduction de 99,99 %)

Pulvérisation

AOAC 961.02
modifiée pour les mycobactéries

Lingette jetable

AOAC 961.02 modifiée

ASTM E2362

Exigences supplémentaires relatives aux essais sur les mycobactéries
Allégation contre des mycobactéries spécifiques

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)Note de bas de page 1

Poudres hydrosolubles

AOAC 965.12
US EPA QTBNote de bas de page 1

Toute mycobactérie particulière indiquée sur l'étiquette

2 lots à la NCLNote de bas de page3, 10 supports par lot

Méthode
QTB :
4 réplicats par lot

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur

Sauf mention contraire :

Méthode QTB : 1 x 107 à 1 x 108 UFC par ml

Méthode d'essai sur support : 1 x 104 à 1,0 x 106 UFC par support

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur et au temps de contact proposé

Sauf mention contraire :

Méthode d'essai sur support : 10/10
supports négatifs pour la croissance par lot au temps de contact spécifié, aucune croissance dans les milieux de sous-culture inoculés

Méthode QTB : Chacun des 4 réplicats devrait démontrer une élimination supérieure ou égale à 1,0 x 104 UFC (élimination supérieure ou égale à 4 log10, réduction de 99,99 %)

Pulvérisation AOAC 961.02 modifiée pour les mycobactéries
Lingettes à usage unique

Modifié AOAC 961.02
ASTM E2362

Exigences relatives aux données de confirmation de l'efficacité pour la désinfection des mycobactéries
Mycobactéricide et tuberculocide Se reporter aux exigences de base relatives aux mycobactéries

1 lot à la LIC

10 supports par lot

Méthode QTB :
4 réplicats par lot

Se reporter aux exigences de base relatives aux mycobactéries

Abréviation :

UFC
unité formant une colonie
Note de bas de page 1

La méthode d'utilisation avec dilution est également acceptable pour les biocides par pulvérisation ET sans pulvérisation et pour les biocides qui contiennent des ingrédients non volatils.

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Note de bas de page 2

La méthode QTB de l'EPA des É.­U. est recommandée uniquement pour les biocides à base de glutaraldéhyde.

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Note de bas de page 3

Si vous souhaitez commercialiser votre biocide en tant que mycobactéricide, vous devez tester l'espèce de mycobactérie appropriée à la LIC. Des allégations concernant des mycobactéries supplémentaires peuvent être testées au NCL. Si vous souhaitez commercialiser votre biocide uniquement avec des allégations concernant des mycobactéries spécifiques, vous devez tester toutes les allégations concernant des mycobactéries spécifiques au LIC.

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Désinfection des champignons

Pour faire des allégations contre les champignons pour votre biocide, vous devez effectuer des essais fongicides à l'aide de conidies fongiques (spores). Les allégations de type « fongicide » nécessitent des données sur l'efficacité contre Trichophyton mentagrophytes (ATCC 9533)

Si vous voulez faire des allégations particulières contre certains champignons, vous devez fournir des données d'efficacité à l'appui. Si vous n'avez pas de données sur l'efficacité pour étayer l'allégation de « fongicide » d'un produit, seules les allégations spécifiques portant sur l'efficacité du produit contre des champignons particuliers devraient figurer sur l'étiquette du produit.

Tableau 5 : Désinfection des champignons sur les surfaces dures
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, supports par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Exigences de base relatives aux essais sur les champignons
Fongicide

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)Note de bas de page 1

Poudres hydrosolubles

AOAC 955.17

Méthodes d'utilisation avec dilution de l'AOAC modifiées pour les champignons

Trichophyton interdigitale (anciennement Trichophyton mentagrophytes) (ATCC 9533)

2 lots de LIC, 10 supports (pour les méthodes d'essai sur support)

AOAC 955.17
méthode de suspension : 2 lots à la LIC, 0 support

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur

Sauf mention contraire :

AOAC 955.17
méthode de suspension : 5 x 106 conidies à 5 x 107 conidies par ml

Méthode d'essai sur support : 1 x 104 conidies à 1 x 105
conidies par support

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur et au temps de contact proposé

Méthode d'essai en suspension AOAC 955.17
 : essai effectué avec une durée d'exposition de 10 minutes ou moins

Toutes les spores fongiques devraient être tuées à 10 minutes ou moins pour soutenir un temps de contact de 10 minutes

Méthode d'essai sur support : 10/10
supports négatifs pour la croissance par lot au temps de contact proposé

Pulvérisation

AOAC 961.02

Lingettes à usage uniqueNote de bas de page 2

AOAC 961.02 modifié

ASTM E2362

Allégation contre un champignon particulier (par exemple, C. Auris)Note de bas de page 3

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)Note de bas de page 1

Poudres hydrosolubles

AOAC 955.17

Méthodes d'utilisation avec dilution de l'AOAC modifiées pour les champignons

Tout champignon particulier indiqué sur l'étiquette

Si le biocide a également démontré son efficacité en tant que fongicide :

2 lots à la NCLNote de bas de page 3 , 10 supports (pour la méthode d'essai sur support)

Méthode de suspension de l'AOAC 955.17 : 2 lots à la NCL, 0 support

Si le biocide n'a pas été mis à l'essai comme fongicide :

2 lots à la LICNote de bas de page 3 , 10 supports (pour la méthode d'essai sur support)

Méthode de suspension de l'AOAC 955.17 : 2 lots à la LIC, 0 support

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur

Sauf mention contraire :

Méthode de suspension de l'AOAC 955.17 : 5 x 106 conidies à 5 x 107 conidies par ml

Méthode d'essai sur support : 1 x 104 conidies à 1 x 105
conidies par support

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur et au temps de contact proposé

Méthode d'essai en suspension AOAC 955.17
 : essai effectué avec une durée d'exposition de 10 minutes ou moins

Toutes les spores fongiques devraient être tuées à 10 minutes ou moins pour soutenir un temps de contact de 10 minutes

Méthode d'essai sur support : 10/10 supports négatifs pour la croissance par lot au temps de contact proposé

Pulvérisation AOAC 961.02
Lingettes à usage uniqueNote de bas de page 2

AOAC 961.02 modifié

ASTM E2362

Exigences relatives aux données de confirmation de l'efficacité pour la désinfection des champignons
Fongicide Se reporter aux exigences de base relatives aux champignons

1 lot à la LIC, 10 supports (pour les méthodes d'essai sur support)

Méthode de suspension de l'AOAC 955.17 : 1 lot à la LIC, 0 support

Se reporter aux exigences de base relatives champignons
Note de bas de page 1

Les méthodes d'utilisation avec dilution et suspension sont également acceptables pour les biocides par pulvérisation ET sans pulvérisation et pour les biocides qui contiennent des ingrédients non volatils.

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Note de bas de page 2

On entend par passage le fait de passer d'un côté à l'autre du support en un seul mouvement. Une lingette utilisée pour traiter 10 supports.

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Note de bas de page 3

Si vous cherchez à commercialiser des désinfectants ayant une allégation d'efficacité contre Candida auris, consultez la version la plus récente de Candida Auris – Guidance and Methods for Antimicrobial Efficacy Testing for General Efficacy and Labelling Considerations for Claims against Candida Auris de l'EPA des É.­U (en anglais seulement). Les essais contre C. auris devraient toujours être effectués à la LIC.

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Note de bas de page 4

Si vous souhaitez commercialiser votre biocide en tant que fongicide, vous devez tester T. interdigitale au LIC. Des allégations concernant des champignons supplémentaires, à l'exception de C. auris, peuvent être testées au NCL. Si vous souhaitez commercialiser votre biocide avec des allégations concernant des champignons spécifiques uniquement, vous devez tester toutes les allégations concernant des champignons spécifiques au LIC.

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Désinfection virale

Pour que votre étiquette de biocide mentionne des allégations contre les virus, vous devez démontrer que votre biocide est :

Pour les allégations de virucides à large spectre, vous devez :

Pour toutes les allégations relatives aux virus, vous devriez utiliser la méthode d'essai ASTM E1053 avec :

Remarque : pour une méthode d'essai ASTM E1053 modifiée, utilisez une lingette pour essuyer un support d'essai (le support est grand et la lingette pliée est petite). Nous vous recommandons soit :

Utiliser une méthode statistique appropriée pour calculer la dose infectieuse 50 % (ID50) pour chaque essai. Voici des exemples de méthodes appropriées :

Le virus le plus difficile à tuer figurant sur l'étiquette devrait être testé à la LIC ou en dessous. Il s'agit de n'importe quel petit virus non enveloppé qui est indiqué sur l'étiquette, le cas échéant (par exemple, le calicivirus félin, le rhinovirus).

Tous les virus plus faciles à tuer peuvent être testés à la concentration nominale (NCL) ou à une concentration inférieure. S'il n'y a pas de petit virus non enveloppé sur l'étiquette, les essais devraient être effectués sur l'un des gros virus non enveloppés figurant sur l'étiquette (par exemple, adénovirus de type 5, rotavirus).

Pour les allégations visant seulement les virus enveloppés, des essais devraient être effectués à la LIC contre n'importe lequel des virus enveloppés (par exemple, SARS-CoV-2).

Tableau 6 : Désinfection virale sur les surfaces dures
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, de réplicat ou de support par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Exigences de base relatives aux essais sur les virus
Virucide Liquides (chiffon, serpillière, immersion) Poudres hydrosolubles ASTM E1053 Tout virus spécifique indiqué sur l'étiquette, sauf les virus de substitution pour des allégations d'efficacité contre le virus de l'hépatite B (VHB), le virus de l'hépatite C (VHC) et les norovirus humains

2 lots à la LIC, 1 support par lot pour le virus le plus difficile à tuer figurant sur l'étiquetteNote de bas de page 1

Les virus plus faciles à éliminer peuvent être testés avec deux lots à la NCL, un support par lot

Sauf mention contraire :

Titre viral récupérable minimum après séchage entre 104,80 (6,3 x 104) et 106,3 (1,9 x 106) par support

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur et au temps de contact proposé

La lignée cellulaire hôte devrait présenter des effets cytopathiques (CPE) en présence du virus sélectionné

Le contrôle de neutralisation devrait démontrer une neutralisation complète du biocide

Sauf mention contraire :

S'il y a cytotoxicité, une réduction minimale de 3 log10 du titre viral au-delà du niveau cytotoxique pour tous les supports de l'essai

Pulvérisation ASTM E1053
Lingettes à usage unique ASTM E1053 modifiée
Virucide à large spectre Liquides (chiffon, serpillière, immersion) Poudres hydrosolubles ASTM E1053

Test contre tout petit virus non enveloppé appartenant aux familles suivantes :

  • Picornaviridae (comme le rhinovirus)
  • Parvoviridae (comme le parvovirus canin)
  • Caliciviridae (comme le calicivirus félin)
  • Astroviridae (comme les astrovirus humains)
  • Polyomaviridae (comme le polyomavirus humain)
2 lots à la LIC, 1 support par lotNote de bas de page 2
PulvérisationNote de bas de page 3 ASTM E1053
Lingettes à usage unique ASTM E1053 modifiée
Exigences relatives aux données de confirmation de l'efficacité pour la désinfection des virus
Virucide Se reporter aux exigences de base relatives virus 1 lot à la LIC, 1 support par lot pour le virus le plus difficile à tuer figurant sur l'étiquetteNote de bas de page 1 Se reporter aux exigences de base relatives virus
Virucide à large spectre

2 lots à la LIC

1 support par lotNote de bas de page 2

Note de bas de page 1

Le virus le plus difficile à tuer figurant sur l'étiquette est un petit virus non enveloppé (s'il n'y a pas de petits virus non enveloppés figurant sur l'étiquette, il s'agit de n'importe lequel des grands virus non enveloppés).

Les groupes et les niveaux présumés de résistance sont indiqués ci-dessous :

  • (i) Les petits virus non enveloppés (< 50 nm) (qui devraient présenter un niveau élevé de résistance à l'inactivation) comprennent, par exemple, la famille des Picornaviridae (par exemple, poliovirus, entérovirus, virus de l'hépatite A, rhinovirus) et la famille des Parvoviridae (par exemple, parvovirus).
  • (ii) Les grands virus non enveloppés (> 50 nm) (qui devraient présenter un niveau intermédiaire de résistance à l'inactivation) comprennent, par exemple, la famille des Adenoviridae (par exemple, adénovirus), la famille des Reoviridae (par exemple, rotavirus) et la famille des Papillomaviridae (par exemple, papillomavirus).
  • (iii) Les virus enveloppés (qui devraient avoir un faible niveau de résistance à l'inactivation) comprennent, par exemple, la famille des Coronaviridae (par exemple, le coronavirus), la famille des Flaviviridae (par exemple, le virus de l'hépatite C), la famille des Herpesviridae (par exemple, le virus de l'herpès), la famille des Poxviridae (par exemple, le virus de la vaccine), la famille des Hepadnaviridae (par exemple, le virus de l'hépatite B), la famille des Orthomyxoviridae (par exemple, virus de l'influenza), la famille des Paramyxoviridae (par exemple, le virus para-influenza) et la famille des Retroviridae (par exemple, le virus de l'immunodéficience humaine).

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Note de bas de page 2

Si vous testez un petit virus non enveloppé pour une allégation générale de virucide qui est également un virus de substitution (comme le calicivirus félin), vous devez tester ce virus en appliquant l'exigence en matière de réplicats de supports pour un virus de substitution (2 supports par lot).

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Note de bas de page 3

Pour les produits destinés à être appliqués à l'aide d'un pulvérisateur électrostatique, veuillez vous référer à la version la plus récente du document Instructions for Adding Electrostatic Spray Application Directions for Use to Antimicrobial Product Registration de l'EPA des États-Unis (en anglais seulement). Veuillez noter que les données soumises doivent être en conformité avec les BPL.

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Efficacité sur des virus de substitution

Vous pouvez utiliser les virus de substitution suivants pour générer des données d'efficacité à l'appui de certaines allégations de virucide :

Remarque : Des essais sur deux supports d'essai par dilution dans le système d'essai sont acceptables pour les contrôles de cytotoxicité et de neutralisation.

Tableau 7 : Allégations contre les virus sur surface dure étayées par une efficacité sur des virus de substitution
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, de réplicat ou de support par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Exigences de base relatives aux essais sur les virus de substitution
Allégation relative au virus de l'hépatite B chez l'humain (VHB) étayée par l'efficacité contre le virus de substitution

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Protocol for testing the efficacy of disinfectants used to inactivate duck hepatitis B virus and to support corresponding label claims de l'EPA des É.­U (en anglais seulement). Virus de l'hépatite B du canard (DHBV)

2 lots à la LIC

2 supports par lot

Sauf mention contraire :

Titre viral récupérable minimum après séchage exigé entre 104,80 (6,3 x 104) et 106,3 (1,9 x 106) par support

Conformément aux méthodes d'essai en vigueur et au temps de contact proposé

La lignée cellulaire hôte devrait présenter des effets cytopathiques (CPE) en présence du virus sélectionné

Le contrôle de neutralisation devrait démontrer une neutralisation complète du biocide

Sauf mention contraire :

S'il y a cytotoxicité, une réduction minimale de 3 log10 du titre viral au-delà du niveau cytotoxique pour tous les supports de l'essai

PulvérisationNote de bas de page 2
Lingettes à usage unique
Allégation relative au virus de l'hépatite C chez l'humain (VHC) étayée par l'efficacité contre le virus de substitution

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Virucidal effectiveness test using bovine viral diarrhea virus (BVDV) as surrogates for human hepatitis C virus de l'EPA des É.­U (en anglais seulement). Virus de la diarrhée virale bovine (VDB)
PulvérisationNote de bas de page 2
Lingettes à usage unique
Allégation relative au norovirus humain étayée par l'efficacité contre le virus de substitution

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Initial virucidal effectiveness test: Using feline calicivirus as surrogate for norovirus de l'EPA des É.­U. (en anglais seulement). Calicivirus félin
PulvérisationNote de bas de page 2
Lingettes à usage unique
Exigences relatives aux données de confirmation de l'efficacité pour la désinfection des virus étayées par des virus de substitution
Norovirus humainNote de bas de page 1 Se reporter aux exigences de base relatives aux virus de substitution 1 lot à la LIC, 2 supports par lot Se reporter aux exigences de base relatives aux virus de substitution
Note de bas de page 2

Les données de confirmation de l'efficacité ne sont requises pour le norovirus que lorsqu'il s'agit du virus le plus difficile à tuer sur l'étiquette.

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Note de bas de page 3

Pour les produits destinés à être appliqués à l'aide d'un pulvérisateur électrostatique, veuillez vous référer à la version la plus récente du document Instructions for Adding Electrostatic Spray Application Directions for Use to Antimicrobial Product Registration de l'EPA des États-Unis (en anglais seulement). Veuillez noter que les données soumises doivent être en conformité avec les BPL.

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Agent stérilisateur et spores

Vous devez effectuer des essais d'efficacité sur des spores viables (et non sur des cellules végétatives) pour toutes les allégations relatives aux spores. Si vous souhaitez étiqueter votre biocide en tant que sporicide, biocide sporicide ou agent stérilisateur, vous devez disposer de données d'efficacité obtenues en utilisant la méthode AOAC 966.04 contre les spores des deux bactéries sporulées suivantes :

Communiquez avec nous avant de présenter une demande pour connaître les exigences en matière de données acceptables à l'appui de votre allégation.

Pour toutes les allégations de type « agent stérilisateur » et « sporicide », utiliser la méthode d'essai 966.04 de l'AOAC avec :

Si vous voulez faire des allégations spécifiques contre des spores bactériennes particulières, vous devez fournir des données à l'appui de l'efficacité. Vous ne devez inclure une allégation particulière (par exemple, « inactive les spores de Clostridioides difficile » ou « tue les spores de Clostridioides difficile ») sur votre étiquette que si vous :

Pour les allégations relatives à des spores bactériennes supplémentaires propres à une surface (par exemple, Clostridioides difficiles, Bacillus anthracis, Bacillus cereus, Geobacillus stearothermophilus), nous exigeons ce qui suit :

S'il n'y a pas d'allégation générale de sporicide ou d'agent stérilisateur, vous n'avez pas besoin d'effectuer des essais de vérification lorsque vous effectuez des essais uniquement contre des spores bactériennes particulières, comme :

Tableau 8 : Désinfection des surfaces dures contre les spores bactériennes
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, supports par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Exigences de base relatives à l'analyse des spores bactériennes
Agent stérilisateur

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

AOAC 966.04 (Utiliser la méthode 1 sauf pour les pénicylindres de porcelaine testés avec Bacillus spizizenii, pour lesquels la méthode 2 doit être utilisée) Bacillus spizizenii (ATCC 19659) (auparavant appelé Bacillus subtilis subsp. spizizenii) (méthode 1 de l'AOAC 966.04 pour la production de spores pour les sutures de soie et la méthode 2 de l'AOAC 966.04 pour la production de spores pour les pénicylindres en porcelaine) et Clostridium sporogenes (ATCC 3584) (méthode 1 de l'AOAC 966.04 pour la production de spores)

3 lots à la LIC

2 types de supports (boucle de suture et pénicylindres en porcelaine, tel que prescrit dans la version de la méthode d'essai en vigueur).

60 supports par type par lotNote de bas de page 1

Sauf mention contraire :

Numération moyenne du contrôle de 1 x 105 à 1 x 106
spores par support, pour les types de microbes et de supports

Sauf mention contraire :

720/720 supports négatifs pour la croissance au temps de contact proposé et pour les essais de vérification : 120/120 supports négatifs pour la croissance au temps de contact proposé

Pulvérisations, brouillards, mousses Un biocide liquide appliqué par pulvérisation à l'aide d'une pompe ou d'une gâchette devrait être testé en tant que liquide.
Sporicide

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

AOAC 966.04 (méthode 1 : boucles de suture de soie, méthode 2 : pénicylindres de porcelaine) (Utiliser la méthode 1 sauf pour les pénicylindres de porcelaine testés avec Bacillus spizizenii, pour lesquels la méthode 2 doit être utilisée) Bacillus spizizenii  (ATCC 19659) (auparavant appelé Bacillus subtilis subsp. spizizenii) (méthode 1 de l'AOAC 966.04 pour la production de spores pour les sutures de soie et la méthode 2 de l'AOAC 966.04 pour la production de spores pour les pénicylindres en porcelaine) et Clostridium sporogenes (ATCC 3584) (méthode 2 de l'AOAC 966.04 pour la production de spores)

3 lots à la LIC

Au moins un type de support pour une allégation de sporicide propre à une surface (pénicylindres en acier inoxydable, pénicylindres en porcelaine ou boucles de suture en soie), tel que prescrit dans la version en vigueur de la méthode d'essai

60 supports par type par lotNote de bas de page 2

Sauf mention contraire :

Numération moyenne du contrôle de 1 x 105 à 1 x 106 spores par support, pour les types de microbes et de supports

Sauf mention contraire :

360/360 supports négatifs pour la croissance au temps de contact proposé et pour les essais de vérification :

60/60 supports négatifs pour la croissance au temps de contact proposé (avec 30 supports pour chaque micro-organisme testé)

Pulvérisations, brouillards, mousses Un biocide liquide appliqué par pulvérisation à l'aide d'une pompe ou d'une gâchette devrait être testé en tant que liquide.
Exigences supplémentaires en matière d'analyse des spores bactériennes

Allégations contre les spores bactériennes supplémentaires (par exemple, Bacillus cereus (ATCC 14579), Bacillus anthracis (ATCC 14578),
Geobacillus stearothermophilus (ATCC 12980)Note de bas de page 3

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

AOAC 966.04 (méthode 1 : boucles de suture de soie, méthode 2 : pénicylindres de porcelaine) ou une méthode d'essai spécifique pour les organismes d'essai (comme C. difficile) Toute spore bactérienne particulière déclarée sur l'étiquette avec l'allégation de sporicide générale

2 lots à la LIC

1 type de support (pénicylindre en acier inoxydable, boucle de suture ou pénicylindre en porcelaine)

30 supports par type par lot

Sauf mention contraire :

Numération moyenne du contrôle de 1 x 105 à 1 x 106
spores par support, pour chaque type de spore bactérienne et de support

Sauf mention contraire :

60/60 supports négatifs pour la croissance pour chaque type de support au temps de contact proposé

Pulvérisations, brouillards, mousses Un biocide liquide appliqué par pulvérisation à l'aide d'une pompe ou d'une gâchette devrait être testé en tant que liquide
Données de confirmation requises pour l'efficacité contre les spores bactériennes
Agent stérilisateur Mêmes exigences que pour les spores bactériennes de base

2 lots à la LIC

2 types de support

30 supports par type par lot

Mêmes exigences que pour les spores bactériennes de base
Sporicide

2 lots à la LIC

1 type de support

30 supports par lot

Spores bactériennes supplémentaires

Mêmes exigences que pour les spores bactériennes supplémentaires

Essais de confirmation pour les bactéries supplémentaires s'il n'y a pas d'allégation générale de sporicide ou d'agent stérilisateur

2 lots à la LIC

1 type de support

30 supports par lot lorsque la méthode AOAC 966.04 est utilisée

Note de bas de page 1

Allégations d'agent stérilisateur :

  • 3 échantillons de biocide à la LIC (représentant 3 lots composés séparément par spore bactérienne [720 supports testés avec la méthode AOAC 966.04, méthodes 1 et 2])
  • chaque lot composé comprend 2 types différents de supports, chaque type contenant 60 supports inoculés et 2 micro-organismes d'essai différents
  • des essais de vérification visant à confirmer l'allégation figurant sur l'étiquette, avec un essai supplémentaire réalisé dans un laboratoire différent du laboratoire d'origine ou dans le même laboratoire en utilisant un personnel différent et en utilisant la même procédure d'essai et les mêmes conditions que lors du premier essai en laboratoire.
  • essai de vérification d'un lot en utilisant les deux types de supports et 30 supports par lot (par exemple, 2 types de supports x 2 micro-organismes d'essai x 60 supports par type = 240 supports par lot d'échantillons, ou 3 lots de biocides x 240 supports par lot = 720 supports)

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Note de bas de page 2

Allégations de sporicide :

  • essais sur 3 échantillons du produit à la LIC, représentant 3 lots composés séparément, par type de spore bactérienne.
  • 60 supports inoculés d'un type (par exemple, pénicylindres en acier inoxydable, pénicylindres en porcelaine ou boucles de suture en soie) par lot et par spore bactérienne, pour l'allégation de sporicide spécifique à la surface.
  • utiliser le même type de support pour les deux microbes (par exemple, 1 type de support x 2 micro-organismes à tester x 60 supports par type = 120 supports par échantillon de lot, pour un total de 360 supports testés en 3 lots)
  • des essais de vérification visant à confirmer l'allégation figurant sur l'étiquette, avec un essai supplémentaire réalisé dans un laboratoire différent du laboratoire d'origine ou dans le même laboratoire en utilisant un personnel différent et en utilisant la même procédure d'essai et les mêmes conditions que lors du premier essai en laboratoire.
  • essai de vérification d'un lot avec un type de support et 30 supports par lot

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Note de bas de page 3

Lors des essais concernant les allégations de sporicide, d'agent stérilisateur ou les allégations relatives aux spores bactériennes additionnelles, il convient d'utiliser :

  • des boucles de suture en soie comme type de support souple ou
  • des boucles en Dacron (polyester tressé) en cas d'essai avec des produits chimiques oxydants tels que des biocides contenant du peroxyde, de l'acide peracétique, du dioxyde de chlore ou de l'hypochlorite de sodium.

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Allégations étayées uniquement par Clostridioides difficile

Pour les allégations relatives à Clostridioides difficiles (ATCC 43598) sans allégation de sporicide :

Tableau 9 : Désinfection des surfaces dures contre Clostridioides difficile sans allégation de sporicide
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, supports par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Allégation relative à Clostridioides difficiles (anciennement Clostridium difficile) sans allégation de sporicide

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Pulvérisation

Lingettes à usage unique

Utiliser la méthode d'essai ASTM E3218 pour évaluer l'efficacité des biocides

Utiliser la charge équivalente à trois parties de saleté indiquée dans la méthode d'essai ASTM E3218 ou une charge de saleté d'au moins 5 % si l'on utilise une méthode alternative.

Un essai d'humidité est requis pour démontrer que le biocide atteindra le temps de contact requis lorsque le liquide extrait de la lingette est utilisé pour les tests pour les biocides sous forme de lingettes à usage unique.

Clostridioides difficiles (anciennement Clostridium difficile) (ATCC 43598)

Utiliser la méthode d'essai ASTM E2839 pour produire et entreposer des spores

3 lots à la LIC

10 supports (acier inoxydable de type AISI 304) par lot

Sauf mention contraire :

1 x 106 à 1 x 107 spores par support

Sauf mention contraire :

Réduction moyenne de 6 log10 basée sur les spores récupérables en 10 minutes ou moins

Données de confirmation requises contre Clostridioides difficile sans allégation de sporicide
Allégation relative à Clostridioides difficiles (auparavant appelé Clostridium difficile) sans allégation de sporicide Mêmes exigences que pour Clostridioides difficile sans allégation de sporicide

2 lots à la LIC

10 support (acier inoxydable de type AISI 304) par lot

Mêmes exigences que pour Clostridioides difficile sans allégation de sporicide

Assainisseurs pour les surfaces dures qui entrent en contact et sans contact avec les aliments

Les assainisseurs réduisent considérablement le nombre de microbes sur une surface inerte non liquide en raison de l'action antimicrobienne des ingrédients actifs. Ils ne détruisent pas ou n'éliminent pas tous les micro-organismes.

Assainisseur de surface dure non poreuse sans contact avec les aliments

Vous devriez utiliser des bactéries végétatives pour vos essais afin de démontrer que votre biocide est un assainisseur de surface sans contact avec les aliments. Une fois qu'il a été démontré que le biocide est un assainisseur de surface sans contact avec les aliments, vous pouvez faire figurer sur l'étiquette de votre biocide des allégations supplémentaires d'assainissement de surface sans contact avec les aliments visant des bactéries spécifiques (par exemple, Escherichia coli).

Pour pouvoir ajouter l'allégation « assainisseur de surface sans contact avec les aliments » sur l'étiquette, vous devez fournir des données sur l'efficacité contre les principales bactéries suivantes :

Pour ajouter des allégations d'assainissement pour les surfaces sans contact avec les aliments contre les virus sur l'étiquette du biocide, veuillez vous référer à la version la plus récente du document Interim Guidance for the Evaluation of Products for Claims Against Viruses de l'EPA des États-Unis (en anglais seulement).

Tableau 10 : Assainisseurs pour les surfaces dures sans contact avec les aliments
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, supports par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Exigences de base de l'analyse de l'assainissement des bactéries présentes sur les surfaces sans contact avec les aliments
Assainisseur pour les surfaces sans contact avec les aliments Liquides (chiffon, serpillière, immersion)Poudres hydrosolubles ASTM E1153

Staphylococcus aureus (ATCC 6538)

et

Klebsiella pneumoniae (ATCC 4352)

ou

Klebsiella aerogenes (auparavant appelé Enterobacter aerogenes) (ATCC 13048)

3 lots à la LIC (lots composés séparément par type de bactérie)

5 supports par lot par bactérie

Une moyenne d'au moins 7,5 x 105
(5,88 log) bactéries devraient survivre sur les carrés de contrôle inoculés avec une limite supérieure de 2,0 x 106 (6,3 log)

Conformément à la méthode d'essai en vigueur et au temps de contact proposé

Sauf mention contraire :

Réduction moyenne supérieure ou égale à 99,9 % (au moins 3 log10) pour chaque bactérie à l'intérieur d'un temps de contact de 5 minutes

Pulvérisation

Lingettes à usage unique

ASTM E1153 modifiée
Exigences de l'analyse de base pour l'assainissement de bactéries additionnelles présentes sur les surfaces sans contact avec les aliments
Allégation contre des bactéries supplémentaires

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

ASTM E1153 Toute bactérie particulière indiquée sur l'étiquette, en plus de l'allégation d'assainissement pour les surfaces sans contact avec les aliments

2 lots à la NCL (lots composés séparément par type de bactérie)

5 supports par lot par bactérie

Une moyenne d'au moins 2,5 x 104
bactéries devraient survivre sur les carrés de contrôle inoculés avec une limite supérieure de 2,0 x 106 (4,4 à 6,3 log)

Conformément à la méthode d'essai en vigueur et au temps de contact proposé

Sauf mention contraire :

Réduction moyenne supérieure ou égale à 99,9 % (au moins 3 log10) pour chaque bactérie à l'intérieur d'un temps de contact de 5 minutes

Pulvérisation

Lingettes à usage unique

ASTM E1153 modifiée
Exigences relatives aux données de confirmation de l'efficacité pour l'assainissement des bactéries présentes sur les surfaces sans contact avec les aliments
Assainisseur pour les surfaces sans contact avec les aliments Mêmes exigences que pour les bactéries de base

2 lots à la LIC

5 supports par lot

Mêmes exigences que pour les bactéries de base

Assainisseur pour les surfaces qui entrent en contact avec les aliments

Pour déclarer que votre biocide est un assainisseur pour les surfaces entrant en contact avec les aliments, vous devez fournir des données d'efficacité liées à la nature chimique de votre biocide (voir le tableau 11). Une fois qu'il a été démontré que le biocide est un assainisseur pour les surfaces entrant en contact avec les aliments, vous pouvez ajouter des allégations supplémentaires relatives à l'assainissement de surfaces entrant en contact avec les aliments pour des bactéries spécifiques sur l'étiquette de votre biocide.

Pour ajouter l'allégation « assainisseur de surfaces entrant en contact avec des aliments » sur l'étiquette, vous devez fournir des données d'efficacité contre les bactéries de base suivantes :

Pour ajouter des allégations d'assainissement des surfaces entrant en contact avec les aliments contre les virus sur l'étiquette du biocide, veuillez vous référer à la version la plus récente du document Interim Guidance for the Evaluation of Products for Claims Against Viruses de l'EPA des États-Unis (en anglais seulement).

Tableau 11 : Exemples d'ingrédients actifs halogénés et non halogénés
Non halogéné Halogéné
  • Acide peracétique
  • Peroxyde d'hydrogène
  • Phosphate de trisodium chloré
  • Détergents anioniques et formulants acides
  • Composés d'ammonium quaternaire
  • Composés liés au peroxyde d'hydrogène
  • Iodophores
  • Halogénures mélangés
  • Produits chimiques chlorés
Tableau 12 : Assainisseurs pour les surfaces dures entrant en contact avec les aliments
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, supports par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Exigences de base de l'analyse de l'assainissement des bactéries présentes sur les surfaces entrant en contact avec les aliments
Assainisseur pour les surfaces entrant en contact avec les aliments

Pour les biocides non halogénés :

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Pulvérisation

AOAC 960.09

Escherichia coli (ATCC 11229)

et

Staphylococcus aureus (ATCC 6538)

3 lots à la LIC (3 lots composés distincts par bactérie)
Utiliser le nombre de supports et les types de supports prescrits dans la méthode d'essai en vigueur

La numération des contrôles devrait se situer entre 1 x 107 et 1 x 108 (7,0 à 8,0 log)

Sauf mention contraire :

Une réduction de 5 log10 de chaque bactérie en 30 s

Pour les biocides halogénés :

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Pulvérisation

AOAC 955.16

Salmonella enterica (ATCC 6539)

ou

Staphylococcus aureus (ATCC 6538)

Tel qu'indiqué dans la méthode d'essai en vigueur

Sauf mention contraire :

Les résultats des tests devraient démontrer à une minute des concentrations de biocides équivalentes en activité à 50, 100 ou 200 ppm de chlore disponible tel qu'indiqué sur l'étiquette (la norme de référence est l'hypochlorite de sodium).

Lingettes à usage uniqueNote de bas de page 1 Draft Interim Guidance for Non-Residual Sanitization of Hard Inanimate Food Contact Surfaces Using Pre- Saturated Towelettes de l'EPA des É.­U. (en anglais seulement).

Escherichia coli (ATCC 11229)

et

Staphylococcus aureus (ATCC 6538)

Tel qu'indiqué dans la méthode d'essai en vigueur

Sauf mention contraire :

Réduction minimale de 99,999 % (5 log10) de chaque bactérie à 30 secondes

Exigences relatives aux essais d'assainissement pour les surfaces entrant en contact avec les aliments pour les bactéries supplémentaires
Allégation relative à bactéries supplémentaires

Pour les biocides non halogénés :

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Pulvérisation

AOAC 960.09 Toute bactérie particulière indiquée sur l'étiquette, en plus de l'allégation d'assainissement pour les surfaces entrant en contact avec les aliments

2 lots à la NCL (2 lots composés séparément par type de bactérie)

Utiliser le nombre de supports et les types de supports prescrits dans la méthode d'essai en vigueur

La numération des contrôles devrait se situer entre 1 x 107 et 1 x 107 (7,0 à 8,0 log) Une réduction de 5 log10 de chaque bactérie en 30 s

Pour les biocides halogénés :

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Pulvérisation

AOAC 955.16 Tel qu'indiqué dans la méthode d'essai en vigueur

Les résultats des tests devraient démontrer à 1 minute des concentrations de biocides équivalentes en activité à 50, 100 ou 200 ppm de chlore disponible tel qu'indiqué sur l'étiquette (la norme de référence est l'hypochlorite de sodium)

Lingettes à usage unique Draft Interim Guidance for Non-Residual Sanitization of Hard Inanimate Food Contact Surfaces Using Pre-Saturated Towelettes de l'EPA des É.­U (en anglais seulement). Tel qu'indiqué dans la méthode d'essai en vigueur Réduction minimale de 99,999 % (5 log10) de chaque bactérie à 30 secondes
Exigences en matière de données de confirmation pour l'assainissement des surfaces entrant en contact avec les aliments
Assainisseur pour les surfaces entrant en contact avec les aliments Mêmes exigences que pour les bactéries de base pour l'assainissement des

2 lots à la LIC
Nombre de
supports et types de surfaces prescrits dans la méthode d'essai en vigueur

Mêmes exigences que pour les bactéries de base pour l'assainissement des

Abréviation :

ppm
parties par million
Note de bas de page 1

Pour les lingettes biocides :

  • surface d'essai égale à 0,37 m2 (4 pieds2) en utilisant une lingette pour essuyer le nombre de supports correspondant à cette surface
  • au minimum, les essais sur des surfaces, y compris :
    • l'acier inoxydable ou le verre et
    • un plastique dont la surface est rugueuse (par exemple, une planche à découper en plastique)

Retour à la référence de la note de bas de page 1

Utilisation sur des surfaces dures poreuses alternatives

Si votre biocide est destiné à être utilisé sur d'autres types de surfaces dures poreuses, comme le bois, le béton ou le caoutchouc, vous devriez :

Reportez-vous aux lignes directrices 810 sur les essais de rendement des produits de l'EPA des États-Unis pour connaître les considérations générales en matière d'efficacité et d'étiquetage des produits avec des allégations de désinfection ou d'assainissement sur des surfaces dures poreuses alternatives.

Effet désinfectant et assainissant persistant

Allégations d'assainissant persistant

Dans le cas des allégations d'assainissant persistant (moins de 24 heures), vous devriez tester votre biocide pour confirmer qu'il continue à assainir les surfaces malgré la réinoculation et l'abrasion. Selon l'allégation relative à d'assainissement, nous vous recommandons de consulter les documents suivants de l'EPA :

Tableau 13 : Assainisseurs persistants pour les surfaces dures sans contact avec les aliments
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, de réplicat ou de support par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Exigences de base de l'analyse pour l'assainissement persistant des bactéries
Jusqu'à 24 hrNote de bas de page 1

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Pulvérisation

Lingettes à usage unique

Protocol for Residual Self-Safety Activity of Dried Chemical Residuals on Hard, non-porous Surface de l'EPA des É.­U. (protocol 01-1A) Note de bas de page 2 (en anglais seulement)

Staphylococcus aureus (ATCC 6538)

et

Klebsiella pneumoniae (ATCC 4352)

ou

Klebsiella aerogenes (aussi appelé Enterobacter aerogenes) (ATCC 13048)

3 lots à la LIC, 4 supports par lot (et 4 contrôles, 2 contrôles de neutralisation) Un minimum de titre viral récupérable après séchage de 1 x 104 sur les carrés de contrôle inoculés Réduction de 99,9 % (au moins 3 log10) pour chaque bactérie après une procédure d'usure et de réinoculation de 24 heures et un temps de contact de 5 minutes après l'essai d'assainissement
Exigences en matière d'efficacité pour rapprochement de l'assainissement persistant de bactéries supplémentaires
Jusqu'à 24 heures – rapprochement des bactéries supplémentaires Aucune donnée supplémentaire n'est nécessaire pour soutenir les allégations relatives à des bactéries supplémentaires si les critères de rendement pour l'autoassainissement persistant des surfaces dures contre S. aureus (ATCC 6538) et K. aerogenes (ATCC 13048) ou K. pneumoniae (ATCC 4352) sont remplis.
Exigences en matière de données de confirmation pour l'assainissement persistant de bactéries
Jusqu'à 24 heures Mêmes exigences que pour les bactéries de base pour l'assainissement persistant de bactéries sur les surfaces dures

2 lots à la LIC

4 supports par lot (et 4 contrôles, 2 contrôles de neutralisation)

Mêmes exigences que pour les bactéries de base pour l'assainissement persistant de bactéries sur les surfaces dures
Note de bas de page 1

Les résultats des essais d'assainissement persistant contre S. aureus et K. pneumonia ou K. aerogenes appuient les allégations générales d'assainissement persistante (réduction de 99,9 %) pendant 24 heures contre les bactéries et les allégations spécifiques contre les micro-organismes mis à l'essai. Si vous souhaitez indiquer des allégations d'assainissement persistant pour votre biocide, vous devriez d'abord démontrer son efficacité en tant qu'agent d'assainissement non persistant sans contact avec les aliments.

Retour à la référence de la note de bas de page 1

Note de bas de page 2

Les essais de durabilité devraient comprendre 12 cycles d'usure consistant en des abrasions (alternance entre humides et sèches) et des réinoculations pour étayer l'allégation de désinfection persistante pendant 24 heures. Chaque cycle d'usure consiste en deux passages (un passage à gauche et un retour à droite) du matériau d'abrasion sur la surface, suivis d'une réinoculation. Le protocole devrait être modifié pour les lingettes à usage unique. Pour les allégations d'effet persistant plus court (pas moins de 4 heures), l'essai peut être modifié de manière ratiométrique (par exemple, 6 cycles d'usure pour une allégation de persistance de 12 heures). Si vous souhaitez ajouter des allégations d'assainissement persistante pour les lingettes, vous devriez faire traiter les supports en utilisant une lingette par lot pour essuyer 4 supports d'essai. Chaque support est essuyé dans un sens et dans l'autre jusqu'à 3 fois pour un total de 6 passages avant de passer au support suivant. On entend par passage le fait de passer d'un côté à l'autre du support en un seul mouvement.

Retour à la référence de la note de bas de page 2

Allégations de désinfection persistante

Des tests de bactéries et de virus devraient être effectués à la LIC pour deux lots composés séparément. Si votre biocide a des propriétés virucidales, des données de désinfection persistante sont également requises contre le virus le plus difficile à tuer figurant sur l'étiquette.

Pour faire des allégations de bactéricide persistant générales, vous devez démontrer que votre biocide est efficace contre ces deux micro-organismes :

Pour les allégations d'autodésinfection persistante et d'efficacité des résidus chimiques séchés sur les surfaces dures n'entrant pas en contact avec les aliments, consultez :

Ces lignes directrices appuient les allégations de bactéricide et virucide persistant sur les surfaces dures qui n'entrent pas en contact avec les aliments pour les biocides avec des allégations de persistance de 24 heures.

Remarque : Ce document ne traite pas des allégations de désinfection persistante contre les mycobactéries, les champignons, les levures ou les spores bactériennes. Il se limite également aux biocides utilisés sur les surfaces dures et non poreuses qui n'entrent pas en contact avec les aliments et ne traite pas des biocides utilisés sur les surfaces textiles (poreuses). Communiquez avec nous pour discuter des exigences relatives aux essais pour d'autres types d'allégations de persistance.

Tableau 14 : Désinfection bactérienne persistante sur les surfaces dures
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, de réplicat ou de support par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Exigences de base des essais pour la désinfection bactérienne persistante
Jusqu'à 24 heures pour la bactérieNote de bas de page 1

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Pulvérisation

Lingettes à usage unique

Protocol for Residual Self-Safety Activity of Dried Chemical Residuals on Hard, non-porous Surface de l'EPA des É.U. (Protocol 01-1A)Note de bas de page 2 (en anglais seulement)

Staphylococcus aureus (ATCC 6538)

et

Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442)

2 lots à la LIC, 4 supports par lot (et 4 contrôles, 2 contrôles de neutralisation) Un minimum de 1,0 x 105 bactéries viables sur les carrés de contrôle inoculés Une réduction moyenne de 99,999 % (au moins 5 log10) est exigée pour chaque bactérie après une procédure d'usure et de réinoculation de 24 heures et un temps de contact de 10 minutes après l'essai d'assainissement
Rapprochement pour les bactéries supplémentaires pour la désinfection persistante
Jusqu'à 24 heures – allégation couvrant les bactéries supplémentaires Aucune donnée supplémentaire n'est requise si les critères de rendement par rapport à S. aureus (ATCC 6538) et à P. aeruginosa ont été atteints
Exigences relatives aux essais de confirmation de l'efficacité pour la désinfection bactérienne persistante
Jusqu'à 24 heures pour les bactéries Toutes les exigences d'essai sont les mêmes que les exigences de base pour la désinfection bactérienne persistante
Note de bas de page 1

Les essais de désinfection persistante contre S. aureus et P. aeruginosa appuient les allégations générales de désinfection persistante (réduction de 99,999 %) pendant 24 heures contre les bactéries, ainsi que les allégations particulières contre les micro-organismes mis à l'essai. Si vous souhaitez faire des allégations de désinfection persistante pour votre biocide, vous devriez d'abord démontrer son efficacité en tant que désinfectant général (à large spectre) ou désinfectant pour les hôpitaux ou les établissements de soins de santé.

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Note de bas de page 2

Les essais de durabilité devraient comprendre 12 cycles d'usure consistant en des abrasions (alternance entre humides et sèches) et des réinoculations pour étayer l'allégation de désinfection persistante pendant 24 heures. Chaque cycle d'usure consiste en deux passages (un passage à gauche et un retour à droite) du matériau d'abrasion sur la surface, suivis d'une réinoculation. Le protocole devrait être modifié pour les lingettes à usage unique.

  • Pour les allégations d'effet persistant plus court (pas moins de 4 heures), l'essai peut être réduit de manière ratiométrique (par exemple, 6 cycles d'usure pour une allégation de persistance de 12 heures).
  • Ce protocole devrait être modifié pour la mise à l'essai des lingettes. Si vous souhaitez ajouter des allégations d'assainissement persistant pour les lingettes, vous devriez traiter les supports en utilisant une lingette par lot pour essuyer 4 supports d'essai. Chaque support est essuyé dans un sens et dans l'autre jusqu'à 3 fois pour un total de 6 passages avant de passer au support suivant. On entend par passage le fait de passer d'un côté à l'autre du support en un seul mouvement.

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Tableau 15 : Désinfection virale persistante sur les surfaces dures
Allégation Forme physique et méthode d'application Méthodes d'essai recommandées Organismes d'essai Nombre de lots par organisme, de réplicat ou de support par lot Numération - inoculum ou support Critères de rendement pour l'efficacité
Exigences de base de l'essai pour la désinfection virale persistante
Jusqu'à 24 heures pour les virusNote de bas de page 1

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Pulvérisation

Lingettes à usage unique

Protocol for Residual Self-Sanitizing Activity of Dried Chemical Residuals on Hard, Non-Porous Surface de l'EPA des É.­U.
(Protocole 01-1A) (en anglais seulement) modifié pour les tests viraux utilisant la méthode d'essai ASTM E1053.Note de bas de page 2

Virus le plus difficile à tuer indiqué sur l'étiquette (tel qu'un petit virus non enveloppé) 2 lots à la LIC, 4 supports par lot Un minimum de titre viral récupérable après séchage de 1,0 x 104,8 sur les carrés de contrôle inoculés

Réduction moyenne de 99,9 % (au moins 3 log10) pour chaque bactérie après une procédure d'usure et de réinoculation de 24 heures et un temps de contact de 10 minutes après l'essai de désinfection

Le biocide devrait également répondre aux exigences en matière d'efficacité de désinfection virale non persistante pour tous les virus visés par l'allégation de désinfection persistante des surfaces dures

Rapprochement des virus supplémentaires pour la désinfection persistante
Jusqu'à 24 heures – allégation couvrant les virus supplémentaires

Liquides (chiffon, serpillière, immersion)

Poudres hydrosolubles

Pulvérisation

Lingettes à usage unique

Aucune donnée supplémentaire n'est requise si les critères de performance pour la désinfection persistante des surfaces dures contre S. aureus (ATCC 6538), P. aeruginosa et le virus le plus difficile à tuer sont atteints
Exigences relatives aux données de confirmation de l'efficacité pour la désinfection virale persistante
Jusqu'à 24 heures pour les virus Toutes les exigences d'essai sont les mêmes que pour la désinfection virale persistante de base.
Note de bas de page 1

Les biocides avec des allégations d'efficacité de la désinfection virale non persistante devraient également faire l'objet d'un essai d'efficacité virale persistante contre le virus le plus difficile à tuer.

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Note de bas de page 2

Les essais de durabilité devraient comprendre 12 cycles d'usure consistant en des abrasions (alternance entre humides et sèches) et des réinoculations pour étayer l'allégation de désinfection persistante pendant 24 heures. Chaque cycle d'usure consiste en deux passages (un passage à gauche et un retour à droite) du matériau d'abrasion sur la surface, suivis d'une réinoculation. Le protocole devrait être modifié pour les lingettes à usage unique. Pour les allégations d'effet persistant plus court (pas moins de 4 heures), l'essai peut être réduit de manière ratiométrique (par exemple, 6 cycles d'usure pour une allégation de persistance de 12 heures).

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